Istruzioni per l’Uso
Histamine ELISA
Saggio immunoenzimatico per la determinazione diagnostica in vitro
quantitativa di istamina in plasma, urina e sangue EDTA umana. Il test
può anche essere usato per ricerca su colture cellulari supernatanti.
RE59221
96
2-8°C
I B L
I N T E R N A T I O N A L
Flughafenstrasse 52a
D-22335 Hamburg, Germany
Phone: +49 (0)40-53 28 91-0
Fax: +49 (0)40-53 28 91-11
G M B H
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www.IBL-International.com
Histamine ELISA (RE59221)
1.
ITALIANO
USO PREVISTO
Saggio immunoenzimatico per la determinazione diagnostica in vitro quantitativa di istamina in plasma,
urina e sangue EDTA umana. Il test può anche essere usato per ricerca su colture cellulari supernatanti.
2.
SOMMARIO E SPIEGAZIONI
Negli esseri umani l’istamina (ß-imidazol-etilamina) è il principale mediatore e si trova prevalentemente nella
fase iniziale di una reazione anafilattica (reazione allergica di "tipo immediato"). L’istamina deriva dalla
decarbossilazione dell’enzima istidina. Nell’organismo l’istamina è presente in quasi tutti i tessuti ed è
immagazzinata principalmente nei granuli metacromatici dei mastociti e nei granulociti basofili. L’istamina è
presente in forma legata e inattiva e viene rilasciata solo se richiesta. Come molti altri mediatori, l’istamina
non media solo molti sintomi clinici di anafilassi ma induce anche una serie di effetti in direzione di una
terminazione della reazione anafilattica. L’azione biologica dell’istamina nei tessuti è garantita da tre diversi
recettori di membrana o di superficie, vale a dire i recettori H1, H2 ed H3. Per la determinazione
dell’istamina è d’interesse clinico la quantificazione del rilascio d’istamina dai granulociti basofili nei casi di
reazioni allergiche di “tipo immediato”, oltre che la determinazione della quantità di istamina presente nei
fluidi corporei (plasma, urina, supernatanti di colture cellulari), conseguenti alla somministrazione di
allergeni.
IBL offre reagenti supplementari per l’esecuzione di un test di Rilascio dell’Istamina nel sangue intero
eparinizzato (REF RE95000).
3.
PRINCIPIO DEL TEST
Test immunoenzimatico assorbente su fase solida (ELISA) basato sul principio di competizione. Una
quantità sconosciuta dell’antigene presente nel campione e una quantità fissa di antigene legato all’enzima
competono per i siti di legame sugli anticorpi che rivestono i pozzetti. Dopo incubazione i pozzetti vengono
lavati per bloccare la reazione di competizione. Successivamente alla reazione del substrato l’intensità del
colore sviluppato è inversamente proporzionale alla quantità dell’antigene presente nel campione. I risultati
dei campioni possono essere determinati direttamente usando la curva standard.
4.
AVVERTENZE E PRECAUZIONI
1. Solo per uso diagnostico in-vitro. Solo per uso professionale.
2. Leggere attentamente le istruzioni prima di iniziare il test. Utilizzare il manuale fornito nel kit. Assicurarsi
di aver compreso tutte le indicazioni.
3. In caso di danneggiamento del kit contattare IBL o il Vostro fornitore entro 1 settimana dal ricevimento
della merce. Non utilizzare i componenti danneggiati ma conservarli per fornire prove del danno assieme
al reclamo che inoltrerete al produttore/fornitore.
4. Rispettare lotto e scadenze. Non scambiare o mescolare tra loro reagenti di lotti diversi. Non usare i
reagenti scaduti.
5. Attenersi alle Buone Pratiche di Laboratorio e alle direttive di sicurezza. Indossare camici, guanti in
lattice e occhiali protettivi se necessario.
6. Alcuni reagenti del kit contengono sostanze pericolose che potrebbero causare irritazioni a pelle ed
occhi. Consultare la sezione MATERIALE FORNITO e le etichette per i dettagli precisi. Schede di
sicurezza del prodotto sono disponibili sul sito web IBL o su richiesta specifica ad IBL/fornitore.
7. I reagenti preparati e usati e le sostanze chimiche del kit devono essere trattati come rifiuti pericolosi
secondo le normative di sicurezza e la legislazione vigente nel Paese in cui il prodotto viene usato.
8. Il personale delle pulizie dev’essere informato dal personale specializzato sui possibili rischi e sulle
procedure da adottare.
9. Evitare il contatto con la soluzione stop. Può causare irritazioni e ustioni della pelle.
10. Alcuni reagenti contengono azido di sodio (NaN3) come conservante. In caso di contatto con occhi e
pelle risciacquare subito abbondantemente. NaN3 potrebbe reagire con piombo e rame piombato
formando metalli azidici esplosivi. Quando si eliminano i reagenti provvedere a bagnarli con grandi
quantità di acqua per evitare formazione di azidi.
11. Tutti i reagenti del kit contenenti siero umano o plasma sono risultati negativi rispetto a HIV I/II, HBsAg e
HCV. Si raccomanda tuttavia di trattarli come potenzialmente pericolosi poiché non si può escludere in
maniera assoluta la presenza di questi o di altri agenti infettivi.
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5.
ITALIANO
CONSERVAZIONE E STABILITÀ
Il kit è spedito e trasportato a temperatura ambiente e deve essere conservato a 2-8 °C. Non esporre a luce
solare diretta e ad alte temperature. L’informazioni relative a conservazione e stabilità di tutti i reagenti e dei
campioni sono riportate nel capitolo corrispondente.
La piastra microtitrata aperta è stabile fino a scadenza del kit se conservata nel suo involucro ben chiuso
riposta a 2–8 °C.
6.
PRELIEVO E CONSERVAZIONE DEI CAMPIONI
Plasma (EDTA, Eparina)
Osservare le classiche precauzioni durante il prelievo venoso. Conservare l’integrità del campione di
sangue dal momento del prelievo al momento dell’esecuzione del test. Non usare campioni emolizzati,
itterici o lipemici. I campioni torbidi devono essere centrifugati per rimuovere il materiale particolato al loro
interno.
Conservazione:
Stabilità:
2-8°C
5h
≤ -20°C
≤ -70°C
(Aliquote)
(Aliquote)
3 mesi
2 annos
Non esporre alla luce solare diretta e al calore.
Evitare la ripetizione di cicli di congelamento/scongelamento.
Spedire i campioni dopo loro congelamento.
Urina
È possibile usare campioni freschi e campioni delle 24 ore. Il volume totale delle urine delle 24 ore deve
essere raccolto in un unico recipiente con aggiunta di 10-15 mL di HCl 6 N come conservante. Segnare il
volume totale per il calcolo dei risultati. Mescolare e centrifugare i campioni prima di usare nel saggio.
spontaneo
Conservazione:
Stabilità:
acidificato
2-8°C
2-8°C
8h
3 giorni
≤ -20°C
(Aliquote)
6 mesi
Non esporre alla luce solare diretta e al calore.
Evitare la ripetizione di cicli di congelamento/scongelamento.
Spedire i campioni dopo loro congelamento.
Colture cellulari Supernatant
I supernatanti delle colture cellulari possono essere utilizzati senza precauzioni particolari.
I terreni delle colture cellulari possono contenere istamina in quantità elevate.
Sangue
Istamina totale nel sangue EDTA. Reagenti supplementari possono essere ordinate separamente all’IBL
con la: Terreno ipotonico REF: KSHI771, Tampone di Rilascio REF: KSHI751.
Il rilascio di istamina è effettuato con sangue eparinizzato solo per uso di ricerca.
Per ulteriori informazioni si vedano le istruzioni per l’uso del test di rilascio di istamina (REF RE95000).
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7.
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MATERIALE FORNITO
I reagenti forniti in questo kit sono sufficienti per eseguire fino a 48 determinazioni singole e fino a
48 duplicati in plasma ed urina.
Quantità
Simbolo
Componente
1 x 12x8
MTP
Micropiastra
1 x 7 mL
ANTISERUM
1 x 100 µL
ENZCONJ CONC
7 x 1.0 mL
CAL P A-G
2 x 1.0 mL
CONTROL P 1+2
1 x 2.0 mL
CAL U/C A
5 x 0.25 mL
CAL U/C B-F
2 x 0.25 mL
CONTROL U/C 1+2
1 x 2.25 mL
ACYLREAG
1 x 60 mL
ASSAYBUF CONC
Tampone Saggio Concentrato (5x)
1 x 50 mL
WASHBUF CONC
Tampone Lavaggio Concentrato (20x)
1 x 11 mL
INDICATORBUF
1 x 15 mL
TMB SUBS
1 x 15 mL
TMB STOP
3x
FOIL
8.
Strisce separabili. Coniugato con antisiero anti-coniglio (capra).
Istamina Antisiero
Di colore blu. Pronto/a all’uso.
Contiene: Antisiero (coniglio), Tampone Tris, 0.01 % Thimerosal.
Coniugato Enzimatico Concentrato (200x)
Contiene: Istamina, coniugato a perossidase.
Standards del Plasma A-G
0.0, 0.35; 1.1; 4.0; 14; 50;150 ng/mL
Pronto/a all’uso. Per calibrare campioni di plasma. Standard A = Diluente per
campioni di plasma. Contiene: Istamina, plasma umano.
Controlli del Plasma 1+2
Pronto/a all’uso. Contiene: Istamina, plasma umano. Per le concentrazioni /gli
intervalli accettabili vedere le etichette sulle provette.
Standards del Urina/Colture Cellulari A
0 ng/mL
Pronto/a all’uso. Per calibrare campioni di urina e colture cellulari. Standard
Contiene: 0.1 M HCl.
Standards del Urina/Colture Cellulari B-F
2.7; 8.1; 24.3; 73; 219 ng/mL
Pronto/a all’uso. Per calibrare campioni di urina e colture cellulari. Standard
Contiene: Istamina, 0.1 M HCl.
Controlli del Urina/Colture Cellulari 1+2
Pronto/a all’uso.
Contiene: Istamina, urina umana (acidificato). Per le concentrazioni /gli intervalli
accettabili vedere le etichette sulle provette.
Reagente di Acilazione
Pronto/a all’uso. Contiene: DMF.
Contiene: Tampone Tris, Tween, BSA, 0.05 % Thimerosal.
Contiene: tampone fosfato, Tween, 0.1 % Thimerosal.
Tampone Indicatore
Di colore viola. Pronto/a all’uso. Contiene: Tampone Tris, rosso fenolo (il colore
cambia a pH < 7.5), 0.01 % Thimerosal.
Soluzione Substrato TMB Pronto/a all’uso.
Contiene: TMB, Tampone, stabilizzatori.
Soluzione Stop TMB
Pronto/a all’uso. 1 M H2SO4.
Pellicola Adesiva
MATERIALI NECESSARI MA NON FORNITI
1. Micropipette (Multipette Eppendorf o similari, < 3 % CV). Volumi: 10; 20; 50; 100; 1000 µL
2. Provette di polipropilene monouso, provette di vetro monouso, (12 x 75 mm) o 96- deep well Piastra di
Acilazione (ordinabile separatamente ad IBL con codice: REF ACYLPLATE: KEHP711)
3. Carrello portaprovette
4. Agitatore orbitale (500 rpm)
5. Vortex mixer
6. Micropipetta 8-Canali con contenitori per reagenti
7. Spruzzetta per lavaggi, lavatore per micropiastre automatico o semi automatico
8. Lettore per micropiastre in grado di leggere ad assorbanza di 450 nm
(lunghezza d’onda di riferimento 600-650 nm)
9. Acqua bidistillata o deionizzata
10. Carta assorbente, puntali per pipette e timer
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9.
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NOTE PER LA PROCEDURA
1. Qualsiasi manipolazione impropria dei campioni o modifica alla procedura può compromettere i risultati.
Rispettare rigorosamente i volumi, i tempi e le temperature di incubazione e i passaggi di pretrattamento
dei campioni indicati in metodica. Utilizzare pipette calibrate.
2. Una volta iniziato il test completare tutti i passaggi senza interruzioni. Assicurarsi che tutti i reagenti
siano stati precedentemente preparati in tempo utile. Far raggiungere la temperatura ambiente ai
campioni e ai componenti del kit (18-25 °C) e mescolare delicatamente ciascun reattivo liquido e
campione prima dell’uso. Non creare schiuma durante il mescolamento.
3. Evitare la contaminazione di reagenti, pipette, pozzetti o provette. Usare puntali di plastica nuovi per
ogni reagente, standard e campione. Non scambiare i tappi tra loro. Tappare sempre i flaconi non
utilizzati. Non riutilizzare pozzetti/provette o reagenti.
4. Alcuni componenti contengono un volume ≤ 250 µL di soluzione. Assicurarsi che la soluzione sia sul
fondo del flacone prima di aprirlo.
5. Si consiglia di saggiare i campioni in doppio per poter identificare eventuali errori di pipettamento.
6. Usare uno schema di pipettamento per realizzare un’appropriata distribuzione sulla piastra.
7. Il tempo di incubazione influisce sui risultati. Tutti i pozzetti dovrebbero essere dispensati nello stesso
ordine e sequenza temporale. Si raccomanda una pipetta multicanale a 8 canali per pipettare le
soluzioni in tutti i pozzetti.
8. Il lavaggio della micropiastra è importante. Pozzetti lavati in modo inappropriato possono portare a
risultati erronei. Si raccomanda una pipetta multicanale o un lavatore automatico per piastre. Non far
asciugare i pozzetti tra le varie incubazioni. Non graffiare i pozzetti rivestiti durante risciacqui e
aspirazioni. Risciacquare e versare i reagenti con cura. Durante i risciacqui assicurarsi che i pozzetti
siano ben riempiti con la soluzione di lavaggio e che non ci siano residui nei pozzetti.
9. L’umidità influisce sui pozzetti/tubi rivestiti. Non aprire l’involucro finché non ha raggiunto la temperatura
ambiente. Riporre immediatamente i tubi/pozzetti non utilizzati nell’involucro con il disseccante.
10.
ISTRUZIONI PRE-TEST
Il contenuto del kit per 96 determinazioni può essere diviso per 3 esecuzioni separate.
I volumi indicati di seguito si riferiscono a un'esecuzione con 4 strisce (32 determinazioni).
10.1. Preparazione di componenti liofilizzati o concentrati
Diluire /
Componente
Diluente Rapporto
Note
Conservazione Stabilità
dissolvere
fino a
acqua
20 mL
ASSAYBUF
1:5
2-8°C
2 settimane
100 mL bidist.
fino a
acqua
Togliere i cristalli a
15 mL
WASHBUF
1:20
2-8°C
4 settimane
18-25°C.
300 mL bidist.
Soluzione
con
Preparare freschi ed
ENZCONJ
10 µL(*)
Tampone
1:200 utilizzare solo una volta.
18-25°C
30 min
2 mL
diluita
(*) Prima di diluire assicurarsi che non ci sia liquido nel tappo.
10.2. Diluizione dei Campioni
Campioni sospettati di contenere concentrazioni maggiori dello standard più alto devono essere diluiti
appropriatamente con standard A di urina o plasma (prima del processo di acilazione).
I campioni sospettati di contenere concentrazioni superiori allo standard massimo devono essere diluiti
prima dell’acilazione con mezzi idonei:
Urina: 0.1 M HCl.
Plasma: diluente per campioni (REF: KEHP771), non fornito insieme al kit.
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10.3. Acilazione dei campioni
Per un’esecuzione con un grande numero di campioni, si consiglia opzionalmente la acilazione in 96-deep
well Piastra di Acilazione. (ordinabile separatamente ad IBL con codice REF: ACYLPLATE KEHP711)
Non è possibile determinare i campioni acilati di urina o di colture cellulari usando la curva standard
del plasma, né determinare i campioni di plasma acilati usando la curva standard U/C.
Nota: I campioni acilati possono essere conservati a 2-8°C durante la notte o meglio a–20°C fino a 2 giorni.
10.3.1. Acilazione in provette monouso.
La seguente procedura dev’essere effettuata in due varianti:
Plasma
Pipettare 100 µL di ogni Standard del Plasma, di ogni Controllo del Plasma e di ogni plasma dei
1.
pazienti nelle rispettive provette.
Pipettare 100 µL di Tampone Indicatore in ogni provetta. Agitare.
2.
Pipettare 20 µL di Reagente di Acilazione in ogni provetta.
3.
Agitare ogni provetta nel Vortex immediatamente dopo aver pipettato.
Coprire le provette. Incubare per 30 min a TA (18-25°C).
4.
Pipettare 750 µL di Tampone Saggio diluita in ogni provetta. Mescolare sul Vortex mixer.
5.
Urina, Colture cellulari Supernatant
Pipettare 50 µL di ogni Standard dell’Urina/Colture Cellulari, di ogni Controllo dell’U/C e di ogni
1.
campione di urina dei pazienti / colture cellulari nelle rispettive provette.
Pipettare 50 µL di Tampone Indicatore in ogni provetta. Mescolare sul Vortex mixer. Se l’indicatore
2.
perde il colore, il pH della soluzione è troppo basso e il campione contiene troppo acido. In questo
caso aggiungere altri 50 µL di Tampone Indicatore finchè la soluzione rimane rossastra.
Pipettare 10 µL di Reagente di Acilazione in ogni provetta.
3.
Agitare ogni provetta nel Vortex immediatamente dopo aver pipettato.
Coprire le provette. Incubare per 30 min a TA (18-25°C).
4.
Pipettare 2000 µL di Tampone Saggio diluita in ogni provetta. Agitare completamente nel Vortex.
5.
Sangue (Istamina Totale)
Pipettare 50 µL di ogni campione di sangue EDTA in provette di vetro.
1.
Pipettare 950 µL di Soluzione Ipotonica in ogni provetta.
2.
Incubare per 60 min a 37°C in un bagno d’acqua.
3.
I supernatanti dei rispettivi campioni possono essere conservati a 2-8°C per un giorno. Per una
conservazione più lunga di una settimana congelarli a –20°C. Evitare di congelarli e scongelarli
ripetutamente.
Mescolare sul Vortex mixer. Rimuovere 100 µL per il passaggio di acilazione dell’ELISA per l’Istamina
4.
e pipettare nelle rispettive provette di vetro.
Pipettare 100 µL di ogni Standard del Plasma con 50 µL Tampone di Rilascio nelle rispettive
5.
provette di vetro.
Pipettare 50 µL di ogni Controllo del Plasma con 50 µL Tampone di Rilascio nelle rispettive
6.
provette di vetro.
Pipettare 50 µL di Tampone Indicatore in ogni provetta. Agitare.
7.
Pipettare 20 µL di Reagente di Acilazione in ogni provetta.
8.
Agitare ogni provetta nel Vortex immediatamente dopo aver pipettato.
Coprire le provette. Incubare per 30 min a TA (18-25°C).
9.
10. Pipettare 750 µL di Tampone Saggio diluita in ogni provetta. Mescolare sul Vortex mixer.
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10.3.2. Versione alternativa Acilazione in 96-deep well Piastra di Acilazione.
La 96-deep well Piastra di Acilazione non possono essere usata di nuovo. Usare solamente una
volta che
La seguente procedura dev’essere effettuata in due varianti:
Plasma
Pipettare 100 µL di ogni Standard del Plasma, di ogni Controllo del Plasma e di ogni plasma dei
1.
pazienti nei rispettivi pozzetti della 96-deep well Piastra di Acilazione.
Pipettare 100 µL di Tampone Indicatore in ogni pozzetto. Mescolare delicatamente il contenuto
2.
agitando leggermente la piastra.
Pipettare 20 µL di Reagente di Acilazione in ogni pozzetto. Mescolare delicatamente il contenuto
3.
agitando leggermente la piastra.
Coprire la piastra con pellicola adesiva. Incubare per 30 min a TA (18-25°C).
4.
Pipettare 750 µL di Tampone Saggio diluita in ogni pozzetto.
5.
Mezcolare gli standard, controlli e campioni acilati con una Micropipetta 8-Canali con
6.
contenitori per reagenti e trasferire a Micropiastra (vedi PROCEDURA DEL TEST).
Urina, Colture cellulari Supernatant
Pipettare 50 µL di ogni Standard dell’Urina/Colture Cellulari, di ogni Controllo dell’U/C e di ogni
1.
campione di urina dei pazienti / colture cellulari nei rispettivi pozzetti della 96-deep well Piastra di
Acilazione.
Pipettare 50 µL di Tampone Indicatore in ogni provetta. Mescolare delicatamente il contenuto
2.
agitando leggermente la piastra.Se l’indicatore perde il colore, il pH della soluzione è troppo basso e il
campione contiene troppo acido. In questo caso aggiungere altri 50 µL di Tampone Indicatore finchè
la soluzione rimane rossastra.
Pipettare 10 µL di Reagente di Acilazione in ogni provetta. Mescolare delicatamente il contenuto
3.
agitando leggermente la piastra.
Coprire la piastra con pellicola adesiva. Incubare per 30 min a TA (18-25°C).
4.
Pipettare 2000 µL di Tampone Saggio diluita in ogni pozzetto.
5.
Mezcolare gli standard, controlli e campioni acilati con una Micropipetta 8-Canali con
6.
contenitori per reagenti e trasferire a Micropiastra (vedi PROCEDURA DEL TEST).
11.
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
PROCEDURA DEL TEST
Pipettare 50 µL di Standard acilato, Controllo acilato e campione del paziente acilato nei rispettivi
pozzetti della Piastra microtiter.
Pipettare in ogni pozzetto 50 µL di Coniugato Enzimatico preparato sul momento.
Pipettare 50 µL di Antisiero Istamina in ogni pozzetto.
Coprire la piastra con pellicola adesiva. Incubare 3 h a TA (18-25°C) su un oscillatore orbitale
(500 rpm).
Rimuovere la pellicola adesiva. Eliminare la soluzione d’incubazione. Lavare la piastra 4 volte con
250 µL di Tampone Lavaggio diluito. Rimuovere l’eccesso di soluzione picchiettando la piastra
capovolta su una salvietta di carta.
Per aggiungere le Soluzioni Substrato e Stop usare, possibilmente, una micropipetta 8-canali.
Pipettare con intervalli di tempo costanti per le Soluzioni Stop e Substrato. Usare uno spostamento
positivo ed evitare la formazione di bolle d’aria.
Pipettare in ogni pozzetto 100 µL di Soluzione Substrato TMB preparata sul momento.
Plasma: Incubare 40 min a TA (18-25°C) su un oscillatore orbitale (500 rpm).
Urina/Colture cellulari Supernatant: Incubare 20 min a TA (18-25°C) su un oscillatore orbitale (500
rpm).
Fermare la reazione substrato aggiungendo 100 µL di Soluzione Stop TMB in ogni pozzetto.
Mescolare delicatamente il contenuto agitando leggermente la piastra.
Misurare la densità ottica con un fotometro a 450 nm (Lunghezza d’onda di riferimento: 600-650 nm)
entro 15 min dopo aver pipettato la Soluzione Stop.
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12.
ITALIANO
CONTROLLO DI QUALITA’
I risultati del test sono validi solo se il test è stato eseguito seguendo le istruzioni per l’uso. L’utente deve
inoltre attenersi rigorosamente ai principi della BPL (Buona Pratica di Laboratorio) o a norme equivalenti. Gli
utenti e il laboratorio devono avere un sistema di formulazione della diagnosi conforme alle Buone Pratiche
di Laboratorio. Tutti i controlli devono risultare compresi entro gli intervalli accettabili indicati sulle etichette e
il Certificato QC. Se i criteri non sono soddisfatti il test non è valido e dovrebbe essere ripetuto. Ogni
laboratorio dovrebbe usare campioni noti come ulteriori controlli. Si consiglia la partecipazione a programmi
di controllo qualità periodici.
In caso di deviazioni devono essere forniti i seguenti dati: Scadenza dei reagenti (preparati), condizioni di
conservazione, pipette, strumenti, condizioni d’incubazione e metodi di lavaggio.
13.
CALCOLO DEI RISULTATI
La DO ottenute per gli standard (asse y, lineare) sono messe in grafico rispetto alla loro concentrazione
(asse x, logaritmico) sia su carta per grafico semilogaritmico che con metodo automatico. Buoni risultati si
ottengono con grafici cubic spline, 4 Parametri Logistica o Logit-Log.
Per il calcolo della curva standard utilizzare ogni segnale degli standard (omettere ovviamente i valori dei
duplicati molto al di fuori dei risultati attesi e impiegare il valore singolo più plausibile).
La concentrazione dei campioni può essere ricavata dalla curva standard.
In caso di campioni diluiti i valori devono essere moltiplicati per il corrispondente fattore di diluizione.
I campioni con concentrazioni superiori al più alto degli standards devono essere diluiti come descritto nel
paragrafo ISTRUZIONI PRE-TEST e ritestati.
Calcolare l’escrezione a 24 ore per ciascun campione:
µg/24 h = µg/L x L/24 h
Conversione:
Istamina (ng/mL) x 8.997 = nmol/L
Tipica Curva di Calibrazione Plasma
(Esempio. Non usare per il calcolo!)
Standard
Istamina
DOMedia
(ng/mL)
A
0.0
2.122
B
0.35
1.705
C
1.1
1.534
D
4.0
1.209
E
14
0.802
F
50
0.390
G
150
0.162
(OD)
DO/DOmax
(%)
100
80.3
72.3
57.0
37.8
18.4
7.6
Tipica Curva di Calibrazione Urina
(Esempio. Non usare per il calcolo!)
Standard
Istamina
DOMedia
(ng/mL)
A
0.0
2.476
B
2.7
2.298
C
8.1
1.931
D
24.3
1.413
E
73.0
0.851
F
219
0.402
14.
Histamine ELISA (plasma)
2.000
1.500
1.000
0.500
0.000
0.1
(OD)
10
100
1000
(ng/mL)
Histamine ELISA (urine)
2.500
DO/DOmax
(%)
100
92.8
78.0
57.0
34.3
16.2
1
2.000
1.500
1.000
0.500
0.000
1
10
100
1000
(ng/L)
VALORI ATTESI
I soli risultati non dovrebbero essere l’unica motivazione alla base di una scelta terapeutica. Devono essere
correlati ad altre osservazioni cliniche e test diagnostici.
Soggetti apparentemente sani mostrano i seguenti valori: (95 % percentile)
Plasma
0.2 - 1.0 ng/mL
Si consiglia ad ogni laboratorio di
5 – 56 µg/d (24 h)
Urina
calcolare i propri valori di
8 – 53 µg/g Creatinina (spontaneo)
riferimento.
Sangue
< 60 ng/mL
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15.
ITALIANO
LIMITI DELLA PROCEDURA
La raccolta e conservazione dei campioni ha influenza significativa sui risultati del test. Vedere la sezione
PRELIEVO E CONSERVAZIONE DEI CAMPIONI per maggiori dettagli.
Per le reazioni crociate vedere la sezione PERFORMANCE.
I seguenti componenti del sangue non influenzano significativamente (+/-20% del valore atteso) I risultati del
test fino alle concentrazioni indicate di seguito:
Emoglobina
Bilirubina
Trigliceridi
16.
5 mg/mL
1 mg/mL
30 mg/mL
PERFORMANCE
Linearità
Plasma
Urina
Recupero
Plasma
Urina
Reattività Crociate (%)
Cross-reattività di altre sostanze
0.34
esaminate < 0.005 %
0.09
0.02 ng/mL
Media (Zero-Standard) - 2SD
1.3 ng/mL
Intervallo (ng/mL)
CV (%)
0.5 – 85
2.2 – 13.8
6.2 – 178
3.7 – 6.6
7.6 – 86
6.0 – 9.2
5.2 – 155
7.1 – 12.8
Intervallo (ng/mL)
Diluizioni Seriali fino a
Intervallo (%)
16.5 – 129
1:8
100 - 112
2.0 - 135
1:64
83 - 117
Media (%)
Intervallo (%)
105
90 - 116
% Recupero dopo i picchi
99
83 - 117
Plasma
Test IBL = 0.95 x A - 0.04
r = 0.99; n = 24
Urina
Test IBL = 0.77 x A + 2.86
r = 0.88; n = 26
Plasma
Test IBL = 0.56 x B + 0.01
r = 0.99; n = 20
Urina
Test IBL = 0.68 x B + 11.3
r = 0.99; n = 24
Specificità Analitica
(Reattività Crociate)
Sensibilità Analitica
(Limite di Rilevazione)
Precisione
Sostanza
N-Acetil-Istamina
3-Metil-Istamina
Plasma
Urina
Plasma
Urina
Plasma
Inter-Saggio
Urina
Intra-Saggio
Confronto del metodo
Saggio Concorrente A
Confronto del metodo
Saggio Concorrente A
Confronto del metodo
Saggio Concorrente B
Confronto del metodo
Saggio Concorrente B
17.
RIFERIMENTI BIBLIOGRAFICI SUL PRODOTTO
1. Miyazaki, D. Nakamura, T. Toda, M. Ono S. et al. Macrophage inflammatory protein-1α as a
costimulatory signal for mast cell-mediated immediate hypersensitivity reactions. J. Clinical Investigation
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2. Brown, Simon G A, Wiese Michael, Blackmann Konrad: Ant venom Immunotherapy: a double-blind,
placebo-controlled, crossover trial. The Lancet, Vol 361, March 22 1001-1006 (2003) Address: Royal
Hobart Hospital, Tasmania, Australia
3. Matsumoto, Jun and Matsuda Hajime: Mast-cell dependent histamine release after praziquantel
treatment of Schistosoma Japonicum infection: implications for chemotherapy-related adverse effects.
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5. Ching-Hsiang Hsu, Kaw-Yan Chua, Mi-Hua Tao, Yih-Loong Lai, Heuy-Dong Wu, Shau-Ku Huang & KueHsiung Hsieh (1996). Immunophrophylaxis of allergen- induced immunoglobulin E synthesis and airway
hyperresponsiveness in vivo by genetic immunization. Nature Medicine, Volume 2, Number 5, May
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China
6. Demoly P., Lebel B., et al “Predictive capacity of histamine release for the diagnosis of drug allergy”.
Allergy 54 (1999) 500-506.
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Αριθµός εξετάσεων:
CONC
LYO
IVD
Concentrate / Konzentrat / Concentré / Concentrar / Concentrado / Concentrato / Συµπύκνωµα
Lyophilized / Lyophilisat / Lyophilisé / Liofilizado / Liofilizado / Liofilizzato / Λυοφιλιασµένο
In Vitro Diagnostic Medical Device. / In-vitro-Diagnostikum. / Appareil Médical pour Diagnostics In
Vitro. / Dispositivo Médico para Diagnóstico In Vitro. / Equipamento Médico de Diagnóstico In
Vitro. / Dispositivo Medico Diagnostico In vitro. / Ιατρική συσκευή για In-Vitro ∆ιάγνωση.
Evaluation kit. / Nur für Leistungsbewertungszwecke. / Kit pour évaluation. / Juego de Reactivos
para Evaluació. / Kit de avaliação. / Kit di evaluazione. / Κιτ Αξιολόγησης.
Read instructions before use. / Arbeitsanleitung lesen. / Lire la fiche technique avant emploi. /
Lea las instrucciones antes de usar. / Ler as instruções antes de usar. / Leggere le istruzioni
prima dell’uso. / ∆ιαβάστε τις οδηγίες πριν την χρήση.
Keep away from heat or direct sun light. / Vor Hitze und direkter Sonneneinstrahlung schützen. /
Garder à l’abri de la chaleur et de toute exposition lumineuse. / Manténgase alejado del calor o la
luz solar directa. / Manter longe do calor ou luz solar directa. / Non esporre ai raggi solari. / Να
φυλάσσεται µακριά από θερµότητα και άµεση επαφή µε το φως του ηλίου.
Store at: / Lagern bei: / Stocker à: / Almacene a: / Armazenar a: / Conservare a: / Αποθήκευση
στους:
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Caution! / Vorsicht! / Attention! / ¡Precaución! / Cuidado! / Attenzione! / Προσοχή!
Symbols of the kit components see MATERIALS SUPPLIED.
Die Symbole der Komponenten sind im Kapitel KOMPONENTEN DES KITS beschrieben.
Voir MATERIEL FOURNI pour les symbôles des composants du kit.
Símbolos de los componentes del juego de reactivos, vea MATERIALES SUMINISTRADOS.
Para símbolos dos componentes do kit ver MATERIAIS FORNECIDOS.
Per i simboli dei componenti del kit si veda COMPONENTI DEL KIT.
Για τα σύµβολα των συστατικών του κιτ συµβουλευτείτε το ΠΑΡΕΧΟΜΕΝΑ ΥΛΙΚΑ.
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LIABILITY: Complaints will be accepted in each mode –written or vocal. Preferred is that the complaint is accompanied with the test performance
and results. Any modification of the test procedure or exchange or mixing of components of different lots could negatively affect the results. These
cases invalidate any claim for replacement. Regardless, in the event of any claim, the manufacturer’s liability is not to exceed the value of the test kit.
Any damage caused to the kit during transportation is not subject to the liability of the manufacturer
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