PREPARAZIONI DI
ORGANI ISOLATI IN
FARMACOLOGIA
in vitro
ESPERIMENTI
ex vivo
 Soluzioni saline fisiologiche
Temperatura
Aereazione
Apparati di registrazione
Stimolazione
 Composizione ionica
Substrati energetici
Tamponi
Osmolarità
COMPOSIZIONE DI ALCUNE SOLUZIONI FISIOLOGICHE
Composizione ionica
 Substrati energetici
glucosio
acetato, lattato, piruvato
miscele di aminoacidi
Tamponi
Osmolarità
Substrati energetici
 Tamponi
Bicarbonato
Fosfato
Osmolarità
Substrati energetici
Tamponi
 Osmolarità
utilizzo di sangue completo;
aggiunta di BSA
aggiunta di sostanze varie (es. destrano)
aggiunta di saccarosio
Soluzioni saline fisiologiche
 Temperatura
k(t+10)
Q10 =
kt
Aereazione
Apparati di registrazione
Stimolazione
Soluzioni saline fisiologiche
Temperatura
 Aereazione
Apparati di registrazione
Stimolazione
Soluzioni saline fisiologiche
Temperatura
Aereazione
 Apparati di registrazione
Stimolazione
CONTRAZIONE ISOTONICA
REGISTRAZIONE DI UNA CONTRAZIONE ISOTONICA
CONTRAZIONE ISOMETRICA
REGISTRAZIONE DI UNA CONTRAZIONE ISOMETRICA
Soluzioni saline fisiologiche
Temperatura
Aereazione
Apparati di registrazione
 Stimolazione
elettrodi puntiformi
elettrodi a campo
VALUTAZIONE QUANTITATIVA DEGLI
EFFETTI FARMACOLOGICI
DOSI SINGOLE E DOSI CUMULATIVE
PREPARATI DI
MUSCOLATURA SCHELETRICA
NERVO FRENICO-DIAFRAMMA DI RATTO (I)
NERVO FRENICO-DIAFRAMMA DI RATTO (II)
MUSCOLO RETTO ADDOMINALE DELLA RANA
Muscolatura liscia intestinale
Ileo di cavia
Digiuno di coniglio
Muscolatura liscia vascolare
Striscia di aorta di coniglio
Altri preparati di muscolatura liscia
Striscia del fondo di stomaco di ratto
Utero di ratto
Catena tracheale di cavia
Dotto deferente di cavia
ILEO DI CAVIA: PRELIEVO DEL PREPARATO
ILEO DI CAVIA: LAVAGGIO DEL PREPARATO
ILEO ISOLATO SECONDO
TRENDELENBURG
Muscolatura liscia intestinale
Ileo di cavia
Digiuno di coniglio
Muscolatura liscia vascolare
Striscia di aorta di coniglio
Altri preparati di muscolatura liscia
Striscia del fondo di stomaco di ratto
Utero di ratto
Catena tracheale di cavia
Dotto deferente di cavia
DIGIUNO DI CONIGLIO: PRELIEVO DEL PREPARATO
DIGIUNO DI CONIGLIO SECONDO
LA TECNICA DI MAGNUS
DIGIUNO DI CONIGLIO: PRELIEVO SECONDO LA
TECNICA DI FINKELMAN
DIGIUNO DI CONIGLIO
SECONDO LA TECNICA
DI FINKELMAN
Muscolatura liscia intestinale
Ileo di cavia
Digiuno di coniglio
Muscolatura liscia vascolare
Striscia di aorta di coniglio
Altri preparati di muscolatura liscia
Striscia del fondo di stomaco di ratto
Utero di ratto
Catena tracheale di cavia
Dotto deferente di cavia
STRISCIA DI AORTA DI CONIGLIO: PRELIEVO E
ALLESTIMENTO DEL PREPARATO
STRISCIA DI AORTA
DI CONIGLIO
PREPARAZIONI DI
MUSCOLATURA CARDIACA
1. Preparati che utilizzano il cuore in toto
Cuore isolato e perfuso alla Langendorff
2. Preparati che utilizzano porzioni di muscolo
cardiaco
a) atri
b) strips di ventricolo
c) muscolo papillare
ATRI DI CAVIA ISOLATI
ATRI DI CAVIA ISOLATI
MUSCOLO PAPILLARE
Atri isolati di cavia
Stimolazione elettrica ad una frequenza superiore a quella spontanea
(240/min) tramite impulsi elettrici della durata di 0.5-1.0 msec e di ampiezza
pari al doppio della soglia. L’intensità dello stimolo si misura in Volt o in Ampere
a seconda che si disponga di uno stimolatore a voltaggio costante o a corrente
costante. I valori usati sono generalmente intorno a 5V oppure a 5 mA.
Muscolo papillare di cavia o di ratto
Striscia di ventricolo di cavia o di ratto
La frequenza ottimale di stimolazione per ambedue i preparati è di 60/min. Si
può usare una frequenza più elevata, per es. 150/min, quando si devono
studiare gli effetti di farmaci che possono attivare processi di automatismo
anomalo e che tendono quindi a provocare aritmie. Si usano stimoli della durata
di 0.5-1.0 msec e di ampiezza pari al doppio della soglia (circa 5V o 5mA).
Test sull’attività di farmaci antiaritmici
a) Misura della massima frequenza seguita
b) Misura del periodo refrattario funzionale
MUSCOLO PAPILLARE
isometric