Trasmissione Autosomica Dominante
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Analisi di linkage Vincenzo Nigro Dipartimento di Patologia Generale Seconda Università degli Studi di Napoli Telethon Institute of Genetics and Medicine (TIGEM) Trasmissione Autosomica Dominante un genitore Aa Aa Aa entrambi i genitori aa aa Aa aa AA 50% dei figli manifestano il carattere senza preferenza di sesso A a Aa Aa Aa A allele patologico dominante a allele normale recessivo aa 75% dei figli manifestano il carattere senza preferenza di sesso a a A a A a Genotipi: 1/2 Aa, 1/2 aa Genotipi: 1/4 AA, 1/2 Aa, 1/4 aa Fenotipi: 1/2 affetti, 1/2 non affetti Fenotipi: 3/4 affetti, 1/4 non affetti Espressività Variabile Espressività: grado con il quale la malattia è espressa in un individuo Il tipo e la gravità delle manifestazioni cliniche non sono sempre sovrapponibili negli individui affetti dalla stessa patologia A.D. VARIABILITA’ INTERFAMILIARE o INTRAFAMILIARE Importanza di un accurato esame clinico esteso ai consanguinei di un affetto, anche apparentemente sani Nei figli di soggetti moderatamente affetti la patologia può essere più grave (es. Sclerosi tuberosa) Espressivita’ variabile SINDROME: Un insieme di segni clinici apparentemente non collegati, ma che si osservano contemporaneamente nei pazienti, così di frequente da essere riconosciuti come un’unica patologia e’ tipica dei fenotipi dominanti, anche se la recessivita’ potrebbe essere interpretata come un effetto della espressivita’ variabile il gene a meno che non sia deleto o completamente inattivato, a livello molecolare e’ sempre “dominante”: il problema e’ avere i mezzi per vederlo al livello di popolazione un fenotipo presenta espressivita’ variabile quando all’interno dell’insieme di soggetti sicuramente portatori il fenotipo presenta gravita’ e/o complessita’ diversa. Anche all’interno della famiglia ci puo’ essere espressivita’ variabile Espressivita’ variabile SINDROME DI WAARDENBURG Sindrome completa: sordita’ + occhi di colore diverso + ciuffo di capelli bianchi sulla fronte + precoce incanutimento 1 sordita’ 2 sordita’+ occhi di colore diverso 3 sordita’+ occhi di colore diverso + ciuffo di capelli bianchi sulla fronte 4 ciuffo di capelli bianchi sulla fronte + precoce incanutimento Trasmissione Autosomica Dominante Esordio variabile Il fenotipo puo’ comparire in eta’ avanzata Il fenotipo non e’ congenito pur essendo ereditario CONGENITO : presente alla nascita Dal punto di vista genetico raramente questi fenotipi sono dovuti a nuove mutazioni A livello di popolazione l’allele mutato puo’ essere frequente purche’ l’ insorgenza si verifichi dopo l’inizio dell’eta’ riproduttiva e non limiti la fitness FITNESS: IDONEITA’ BIOLOGICA, piu’ semplicemente : capacita’ di riprodursi Trasmissione Autosomica Dominante Penetranza Incompleta Penetranza: proporzione di individui portatori del gene patologico che hanno segni clinici della malattia Può dipendere: • accuratezza diagnostica (esami clinici e di laboratorio mirati - es. porfiria acuta) • età (esordio variabile - es.Corea di Huntington) • meccanismo d’azione del gene (Retinoblastoma, teoria dei 2 hits di Knudson) Penetranza La penetranza e’ quindi un concetto che si riferisce alla popolazione. A livello del singolo individuo il carattere ha solo due possibilita’ : si manifesta o non si manifesta. E’ piu’ frequente nei caratteri dominanti Sapere che un gene puo’ non essere completamente penetrante, e’ critico per studiarne la genetica o fornire consulenza genetica: un certo soggetto che non manifesta il carattere puo’ essere portatore del gene. E’ critico percio’ il livello di indagine Età di insorgenza della Corea di Huntington a) Probabilità che un individuo portatore del gene mutato abbia sviluppato i sintomi ad una data età b) Rischio che il figlio sano di un soggetto affetto sia portatore del gene mutato ad una determinata età. Penetranza ed espressivita’ La penetranza ridotta non e’ da confondere con l’espressivita’ variabile L’espressivita’ e’ il grado di gravita’con cui fra gli individui che presentano il fenotipo questo si esprime: puo’ costituire un sottoinsieme degli individui “penetranti” Es. Neurofibromatosi: presenza di tumori lungo i nervi periferici e regioni di pigmentazione scura (“macchie di caffelatte”)Tutti i portatori presentano almeno uno dei segni, ma la gravita’ puo’ essere diversa anche all’interno della stessa famiglia: un genitore con macchie e piccoli tumori cutanei benigni puo’ avere un figlio che presenta tumori estesi e maligni. (questa differenza non e’ prevedibile si puo’ solo quantizzare il rischio di ereditare l’allele non il fenotipo) ipotesi sul rischio di ricorrenza 1. La malattia non è genetica 2. La malattia è dovuta a nuova mutazione dominante: rischi di ricorrenza trascurabili nella prole della coppia 3. La trasmissione è autosomica recessiva: rischio di ricorrenza di 1 su 4 per la futura prole indipendentemente dal sesso 4. La malattia è legata all’X recessiva e la madre può essere o meno portatrice: rischio di ricorrenza di 1 su 2 maschi se la madre è portatrice 5. La malattia è poligenica o cromosomica: rischio di ricorrenza ben definito dipendente dal tipo di malattia mappaggio genico Serve ad identificare la posizione cromosomica di un locus genico Possono essere “mappati”: – marcatori genetici anonimi, quali brevi sequenze di DNA (dette STS), DNA microsatelliti, ecc. – geni – loci associati a malattie con trasmissione mendeliana – loci associati a predisposizione a malattie con trasmissione nonmendeliana a cosa serve il mappaggio in genetica medica? – per identificare la localizzazione dei geni malattia – per fare diagnosi indiretta in una famiglia in cui la mutazione responsabile di una malattia genetica mendeliana non è stata ancora identificata – per identificare i geni responsabili della suscettibilità a malattie non mendeliane per localizzare e identificare geni malattia Linkage mapping per fare diagnosi indiretta in una famiglia in cui la mutazione responsabile di una malattia genetica mendeliana non è stata ancora identificata per identificare i geni associati ad una suscettibilità a malattie non mendeliane Segregazione e crossing-over un figlio riceve un cromosoma da ciascun genitore che è il prodotto finale della ricombinazione meiotica Non è possibile ricevere un cromosoma che non abbia effettuato crossing-over principi generali del mappaggio • si segue la segregazione della patologia nei pedigrees utilizzando marcatori genetici a posizione nota • si correla la segregazione della patologia e dei marcatori in più famiglie • quanto più spesso la patologia e un marcatore co-segregano tanto più sono vicini * * * * * * c’è bisogno di famiglie abbastanza grandi in cui si osserva la trasmissione della patologia i membri della famiglia devono essere genotipizzati usando marcatori polimorfici marcatori polimorfici sono noti per ogni cromosoma e di ciascuno si conosce esattamente la posizione cromosomica i marcatori più informativi sono quelli che presentano un elevato grado di eterozigosità, perché questo consente di distinguere l’allele paterno dall’allele materno La nomenclatura D20S906 indica che un marcatore di DNA è singolo nel genoma ed è localizzato sul cromosoma 20; purtroppo il numero 906 non ha alcun rapporto con la posizione Marcatori polimorfici A partire dagli anni 80 RFLP: restriction fragment length polymorphisms Nella accezione attuale, il DNA purificato è amplificato con la PCR. Il prodotto della PCR è quindi tagliato in frammenti di restrizione mediante enzimi di restrizione detti endonucleasi, che attuano il taglio unicamente in corrispondenza di particolari sequenze nucleotidiche, specifiche per ogni enzima. I frammenti di restrizione sono separati per lunghezza mediante elettroforesi su gel d'agarosio RFLP l’enzima di restrizione SmaI taglia l’esanucleotide CCCGGG. La sequenza CCGGGG rende non digeribile il DNA in quella posizione CCGGGG GGCCCC CCCGGG GGGCCC a c Allele 1 c b a b Allele 2 STR • A partire dal 1990 STR: short-tandem repeats or microsatellites –e.g. (CAn) – gttatcttagggctcagtcacacacacacacacacacacatccaggtattggatcaac Quello che varia tra gli alleli è il numero di ripetizioni dell’elemento. E’ molto più frequente riscontrare individui eterozigoti, con un numero di ripetizioni differente nei due alleli Figura 12, microsatelliti Tandem repeat Allele 1 Allele 2 Allele 3 Allele 4 (1,4) (1,3) (1,2) (2,3) ricombinanti R e non ricombinanti NR il 50% deve essere R e il 50% NR se i loci sono posti su cromosomi differenti, mentre i NR sono >50% se i loci sono sintenici. L’analisi della frazione di ricombinazione è alla base del mappaggio • la frazione di ricombinazione tra due loci, q, è compresa tra 0 e 0.5 • Il valore di q non può mai essere maggiore di 0.5, il che indica che i loci sono posizionati molto lontani o su cromosomi differenti • se q è significativamente minore di 0.5 i loci sono “linked” • più piccolo è q più vicini sono i loci l’unità di misura della distanza genetica è il centiMorgan cM La distanza genetica tra due loci è il numero atteso di crossovers per meiosi le distanze piccole sono accurate mentre le grandi sono sottostimate perché un doppio crossover può far pensare a un non ricombinante per valutare distanze grandi occorre sommare distanze piccole per q <10% la correlazione tra q e cM è 1:1 mediamente 1 cM corrisponde a circa 850.000 bp, ma tale valore è inversamente proporzionale alla frequenza di ricombinazione Le meiosi si visualizzano con MLH1 che è parte del macchinario di ricombinazione Nella meiosi maschile che avviene nei testicoli ci sono circa 51 chiasmi e quindi considerando 50cM per chiasma, il genoma è di 2550 cM Nella meiosi femminile che è più difficile da studiare perché avviene a 16-24 settimane di vita fetale ci sono almeno 70 chiasmi (3500 cM), ma si stimano 4280cM Dal momento che la frequenza di ricombinazione è differente si usa un valore medio tra i due sessi Il mappaggio per linkage è basato sull’analisi della ricombinazione = affetto = non affetto Locus malattia Marker dd 25 Dd 11 dd 34 Dd 12 Dd 13 Dd 13 dd 24 Dd 14 D = allele patologico d = allele wild-type dd 24 Dd 23 1° obiettivo - stabilire la fase dd 25 Doppio eterozigote Dd 13 Dd 11 dd 34 Dd 12 Dd 13 dd 24 Dd 14 dd 24 Dd 23 2° obiettivo – contare i ricombinanti dd 25 Dd 11 dd 34 Dd 12 Dd 13 NR Dd 13 NR dd 24 NR Dd 14 NR dd 24 NR Dd 23 R recombinanti q = 1/5 lod-score • Il lod-score misura le probabilità a favore del linkage • Compara la probabilità ad un certo valore di q e la probabilità nel caso non vi sia alcun linkage e quindi che q sia uguale a 0.5 LOD = log of the odds [L(q)/L(0.5)] Z(q) = log10 3° obiettivo – calcolare il LOD score dd 25 Dd 11 Dd 12 Dd 13 NR Dd 13 NR dd 24 NR dd 34 Dd 14 NR dd 24 NR Dd 23 R LOD SCORE (LOD) Z = log10 q R ( 1- q) NR 0.5 (R+NR) = log10 q ( 1- q) 5 0.5 6 Il metodo • La probabilità L(q) è calcolata per i differenti valori di q tra 0 e 0.5 • Un rapporto tra le probabilità è calcolato LR(q) = L(q)/L(0.50) • Il lod-score è il logaritmo in base 10 log10 del rapporto tra le probabilità Z(q) = log10[L(q)/L(0.50)] • La migliore stima della frazione di ricombinazione è il valore di q a cui Z(q) è massimo (MLS) Per le patologie a trasmissione mendeliana Z(q) >> 3 si accetti il linkage per un carattere autosomico Z(q) >>2 si accetti il linkage per un carattere X-linked Z(q) < -2 si respinga definitivamente l’ipotesi di linkage per un particolare valore di q Z(q) > -2 ma < 3 occorrono ulteriori studi linked, no recombination Link utile http://linkage.rockefeller.edu
