DIPARTIMENTO Agraria ANNO ACCADEMICO

DIPARTIMENTO
ANNO ACCADEMICO
CORSO DI LAUREA
INSEGNAMENTO
CFU
TIPO DI ATTIVITÀ
AMBITO DISCIPLINARE
CODICE INSEGNAMENTO
ARTICOLAZIONE IN MODULI
ANNO DI CORSO
PERIODO DELLE LEZIONI
SETTORI SCIENTIFICODISCIPLINARI
DOCENTE
NUMERO DI ORE RISERVATE ALLO
STUDIO PERSONALE
NUMERO DI ORE RISERVATE ALLE
ATTIVITÀ DIDATTICHE ASSISTITE
PROPEDEUTICITÀ
SEDE DI SVOLGIMENTO DELLE
LEZIONI
ORGANIZZAZIONE DELLA
DIDATTICA
MODALITÀ DI FREQUENZA
METODI DI VALUTAZIONE
TIPO DI VALUTAZIONE
CALENDARIO DELLE ATTIVITÀ
DIDATTICHE
ORARIO DI RICEVIMENTO DEGLI
STUDENTI
Agraria
2016-19
Scienze forestali e ambientali
Microbiologia generale
6
Caratterizzante, CFU mutuati dal CdL STAL
Discipline della produzione vegetale
No
Terzo
Primo semestre
AGR/16
Andrea Caridi
Professore associato
Università “Mediterranea” di Reggio Calabria
90
60
Chimica, Genetica
Dipartimento Agraria
Lezioni frontali
Esercitazioni in laboratorio
Facoltativa
Prova orale
Voto in trentesimi
http://www.agraria.unirc.it/calendario_accademico.php
http://www.agraria.unirc.it/scheda_persona.php?id=136
RISULTATI DI APPRENDIMENTO ATTESI
Conoscenza e capacità di comprensione
Acquisizione di competenze teoriche e operative in ambito microbiologico.
Capacità di applicare conoscenza e comprensione
Acquisizione di competenze applicative con riferimento alle tecniche microbiologiche.
Autonomia di giudizio
Valutazione e interpretazione dei dati sperimentali in ambito microbiologico; capacità di operare in
sicurezza in laboratorio.
Abilità comunicative
Comunicazione verbale, scritta e informatica; elaborazione e presentazione di dati sperimentali;
capacità di lavorare in gruppo; trasmissione e divulgazione dell'informazione su temi del settore
microbiologico.
Capacità d’apprendimento
Capacità di sviluppare e approfondire ulteriori competenze in ambito microbiologico, con
riferimento a: consultazione di materiale bibliografico, consultazione di banche dati e altre
informazioni in rete, capacità di apprendere come programmare e realizzare specifici progetti di
ricerca su temi del settore microbiologico.
OBIETTIVI FORMATIVI DEL CORSO
L’insegnamento ha il compito di fornire, anche mediante svolgimento di attività didattiche in
laboratorio, specifiche conoscenze di base sul mondo dei microrganismi, sotto l’aspetto
dell’organizzazione cellulare, metabolica e genetica. Gli studenti apprenderanno, inoltre, alcuni
aspetti applicativi della microbiologia generale, tra cui il riconoscimento dei microrganismi
mediante osservazione microscopica, la loro colorazione, la loro corretta manipolazione, la
preparazione dei substrati di crescita. In tutte le esercitazioni di laboratorio sarà data adeguata enfasi
alle strategie da porre in essere per operare in condizioni di massima sicurezza.
ARTICOLAZIONE DEL CORSO
ARGOMENTO DELLE LEZIONI
Lezione introduttiva: presentazione dei contenuti del programma, del testo di riferimento
suggerito e delle modalità di valutazione adottate.
Il mondo dei microrganismi: generalità su microrganismi; genetica microbica;
metabolismo microbico ed ecologia; generalità su microrganismi e malattie.
I batteri: morfologia delle cellule batteriche; il citoplasma; l’involucro cellulare; la
superficie della cellula batterica; generalità sulla tassonomia batterica.
I microrganismi eucariotici: la morfologia tipica delle cellule eucariotiche; la replicazione
dei microrganismi eucariotici; l’origine delle cellule eucariotiche.
Gli Archaea: generalità.
I virus: generalità sui virus; origine dei virus; coltivazione, purificazione e quantificazione
dei virus; particelle simili ai virus.
Coltivazione dei microrganismi: esigenze nutrizionali dei microrganismi; fattori che
influiscono sulla crescita microbica; la coltivazione dei microrganismi in laboratorio; la
misurazione della crescita della popolazione batterica; eliminazione dei batteri o
prevenzione della crescita.
Replicazione del DNA ed espressione genica: il ruolo del DNA; generalità su
replicazione, trascrizione e traduzione; gli effetti delle mutazioni.
Strategie di replicazione virale: riconoscimento delle cellule ospiti; ingresso e spoliazione
virale; replicazione virale; assemblaggio e uscita virale.
Analisi genetica nei batteri: i batteri come soggetti nella ricerca genetica; ceppi, mutanti e
mutazioni; generalità su enzimi di restrizione, vettori e clonaggio; ricombinazione e
trasferimento del DNA.
Regolazione dell’espressione genica: espressione genica differenziale; l’operone.
Cicli biogeochimici: cicli dei nutrienti; cicli guidati dal metabolismo del carbonio; cicli
guidati dal metabolismo dell’azoto; l’interconnessione dei cicli.
Ecosistemi microbici: i microrganismi nell’ambiente; struttura delle comunità microbiche;
ecosistemi terrestri.
Simbionti microbici: le tipologie d’interazione microrganismo-ospite; i simbionti delle
piante; licheni; la fermentazione ruminale.
Microscopia: principi di microscopia; microscopi ottici; microscopia a contrasto di fase;
microscopia elettronica.
Lezione conclusiva: verifica dell’efficacia didattica del ciclo di lezioni frontali e dibattito
su tematiche di ampio respiro connesse; presentazione del programma delle esercitazioni.
Esercitazione: asepsi e antisepsi: metodologie per l’utilizzazione corretta di ago, ansa,
becco bunsen e altri materiali comuni in microbiologia; utilizzo del microscopio ottico:
determinazione della distanza interpupillare, utilizzo della correzione dell’oculare per
occhio miope, regolazione di diaframma, potenziometro e condensatore, tecnica di messa a
fuoco del preparato in microbiologia.
ORE
1
3
3
3
2
3
4
4
3
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2
3
3
4
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1
1
Esercitazione: preparazione di vetrini per l’osservazione a fresco mediante obiettivi 10x,
1
40x e 100x (con olio per immersione) di colture pure di batteri e lieviti; osservazione
microscopica delle principali differenze strutturali tra procarioti ed eucarioti.
Esercitazione: realizzazione di preparati microscopici mediante vetrino di Kock per
1
l’osservazione della mobilità cellulare di colture pure batteriche.
Esercitazione: tecnica di preparazione del vetrino per la colorazione di Gram: prelievo,
2
dispersione, asciugamento e fissaggio; tecnica della colorazione di Gram: cristalvioletto,
liquido di Lugol, acqua, soluzione decolorante, acqua, safranina, acqua; osservazione con
obiettivo 100x e olio per immersione dei preparati così colorati e identificazione dei difetti
di ciascun vetrino.
Esercitazione: ciclo completo di sterilizzazione di terreni di coltura e differenziali:
3
pesatura degli ingredienti e loro solubilizzazione, confezionamento, sterilizzazione in
autoclave, preparazione delle piastre Petri dei substrati solidi.
Esercitazione: tecnica per l’isolamento dei microrganismi in coltura pura mediante striscio
1
con ansa sterile in piastra Petri.
Esercitazione: preparazione dell’omogeneato di campioni di formaggio per l’analisi
3
microbiologica mediante Stomacher; acquisizione individuale della tecnica di esecuzione
delle diluizioni scalari, anche mediante pipettatura a bocca, e semina in piastra di campioni
di diversa origine per la valutazione della loro carica microbica totale.
Esercitazione: filtrazione mediante membrane di acetato di cellulosa di campioni di acqua
2
di rubinetto e/o di pozzo e semina in terreno solido per l’accertamento della presenza di
coliformi, ai fini del giudizio di potabilità (DL 31/2001).
TOTALE
60 ore
MATERIALE DIDATTICO
Testo di riferimento
Wessner D.R., Dupont C., Charles T.C. - Microbiologia. Prima edizione. Casa Editrice
Ambrosiana (MI), 2015.