Prof. Giorgio Sartor Corso di Laurea Specialistica in Scienze per l’Ambiente e il Territorio Misure con biomarcatori V. Markers enzimatici Copyright © 2001-2006 by Giorgio Sartor. Versione 3.0 - gennaio 2006 All rights reserved. Vie metaboliche e radicali dell’ossigeno Rottura del DNA Inattivazione enzimi Perossidazione lipidica Addotti del DNA Addotti di proteine Prodotti di coniugazione FASE I I HO O2 Fe H2O + O2 7 5 METABOLITI REATTIVI 1 FASE I XENOBIOTICI 2 8 O -2 H2O2 COMPOSTI REDOX 6 O2 4 GSH GPX 9 GSSG H2O NADP+ GR FADred Enzimi a flavina Ciclo redox O2 METABOLITI RADICALICI 3 FADox NADP+ NADPH + H+ NADPH + H+ Addotti di proteine Metabolismo Addotti del DNA gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 2 1 Vie metaboliche e radicali dell’ossigeno 1. Inattivazione di Il metabolismo Rottura I enzimi (inclusoPerossidazione delfase DNA lipidica ossidazione da Citocromo P450) può formare metaboliti O2 reattivi.HO Fe H2O + 2. Il O2 metabolismo di 7 5 fase I può formare 8 specie redox che H2O2 subire possono un O 2 6 ciclo redox. 3. Ciclo redox O2 che 4 comprende GSH GPX flavoproteine. 9 4. Per completare il NADP+ GSSG GR ciclo redox si forma anione superossido NADPH + H+ H2O (O 2 ) e si rigenera il composto di Metabolismo partenza. gs © 2001-2006 ver 3.1 Addotti di proteine Addotti del DNA Prodotti di coniugazione FASE I I METABOLITI REATTIVI 1 FASE I XENOBIOTICI 2 COMPOSTI REDOX FADred Enzimi a flavina Ciclo redox O2 METABOLITI RADICALICI 3 FADox NADP+ NADPH + H+ Addotti di proteine Addotti del DNA Misure con biomarcatori V 3 Vie metaboliche e radicali dell’ossigeno Rottura del DNA Inattivazione enzimi HO O2 Fe H2O + O2 8 Perossidazione lipidica 7 5 O -2 H2O2 6 O2 4 GSH GPX 9 GSSG H2O NADP+ GR NADPH + H+ Addotti 5. In del DNA Addotti Prodotti presenza di ferro l’anione di proteine superossido forma di il coniugazione radicale idrossido (Haber-Weiss). FASE I I 6.METABOLITI L’anioneREATTIVI superossido può 1 dismutare a H2O FASE I 2 ad opera della superossidodismutasi (SOD). XENOBIOTICI 7. In presenza di ferro l’ H2O2 2 forma il radicale idrossido e ossigeno (Fenton). COMPOSTI 8.REDOX L’ H2O2 può essere degradata + ad acqua FAD ad red opera NADP della Ciclo redox Enzimi a catalasi (CAT) o della glutatione flavina perossidasi (GPX). O2 NADPH + H+ FADox 9. La glutatione reduttasi rigenera METABOLITI 3 RADICALICI il glutatione ridotto (GSH) da quello ossidato (GSSG). Addotti di proteine Metabolismo Addotti del DNA gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 4 2 Citocromo P450 (CYP) • Enzima microsomiale, il più versatile tra gli enzimi di fase I. • Inducibile. • Anche conosciuto come ossidasi a funzioni miste (MFO). • Proteina che contiene un gruppo eme – Il complesso formato dal Fe2+ e CO ha uno spettro di assorbimento con massimo centrato a 450 nm (447452) nm. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 5 CYP • Ossida gli xenobiotici usando il NADPH come cofattore e O2 • La reazione procede come ciclo catalitico: RH+O2+H++NADPH ROH+H2O+NADP+ • Non è attivo contro tutti i contaminanti (specialmente gli alogeni) • In alcuni casi genera prodotti tossici (epossidi) • L’induzione delle MFO è un sistema di biomarcatura gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 6 3 Struttura del CYP (1PO5) gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 7 Struttura del CYP (1PO5) gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 8 4 Struttura del CYP (1PO5) AA basici gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 9 Struttura del CYP (1PO5) Cys436 AA basici gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 10 5 Struttura del CYP (1PO5) Cys436 AA basici Cavità gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 11 Struttura del CYP (1PO5) Cavità gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 12 6 Struttura del CYP (1PO5) AA polari AA neutri Cavità gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 13 Struttura del CYP gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 14 7 Struttura del CYP gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 15 Struttura del CYP Canfora gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 16 8 Struttura del CYP gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 17 Ciclo del CYP RH (substrato) (prodotto) ROH Fe3+H2O eFe3+RH H2O Fe3+ROH H2O Fe2+RH FeO3+RH NAD(P)H-citocromo P450 reduttasi O2 [Fe2+O2RH]-1 H2O e- H+ citocromo b5 H+ [Fe2+OOHRH]-1 gs © 2001-2006 ver 3.1 [Fe2+O2RH]-2 Misure con biomarcatori V 18 9 ROH O Meccanismo ciclico del CYP H O RH H Fe(III) R O S (1) H Fe(III) 1. P450 acquo Fe(III) 2. P450 canfora Fe (III) 3. P450 canfora CO Fe(III) 4. P450 prodotto Fe(III) 5. P450 canfora Fe(II) 6. P450 canfora O2Fe(II) 7. P450 ossigeno attivato Fe(IV) H O OH S RH H2O H 2O Fe(III) (4) (7) - HO O O RH O Fe(III) H+ Fe(II) S H+ S H2O RH (2) O RH Fe(IV) e- S H2O2 S 2- O O2 - (5) Fe(II) O RH S O eFe(II) H+ RH S - Fe(II) 2- O RH (6) O RH Fe(II) S (3) S gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 19 Meccanismo • L’ossigeno è legato non ad angolo retto. • Il legame dell’ossigeno allontana il ligando (RH) solo dopo che I due atomi diossigeno si sono ridotti il ligando si riavvicina. Ciò previene la formazione di ROS. • Gli elettroni per la riduzione dell’ossigeno so forniti da una proteina Fe-S (P450 batterica o mitcondriale) o da una NADPH-citocromo P450 ossidoreduttasi FAD/FMN dipendente (microsomi). gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 20 10 Meccanismo generale del CYP H2O NADP+ CYTP450 Reduttasi FMNH2/FADH2 NADPH + H+ ROH CYP Fe3+ CYTP450 Reduttasi FMN/FAD CYP Fe2+ RH 2H+ + O2 gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 21 Meccanismo • Nel complesso con la NADPHcitocromo P450 ossidoreduttasi l’elettrone si muove attraverso lo scheletro della proteina gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 22 11 Struttura del CYP gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 23 Colesterolo monoossigenasi (CYTP450scc - EC 1.14.15.6 - CYP11A) H2O H OH NADP+ NADPH + H+ CYTP450 Reduttasi FMNH2 CYTP450 Reduttasi FMN H Colesterolo monoossigenasi Fe3+ H H HO 22β-idrossi colesterolo Colesterolo monoossigenasi Fe2+ H H H H HO colesterolo 2H+ + O2 gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 24 12 Reazioni catalizzate dal citocromo P450 • • • • • • • • • • • • Idrossilazione di aromatici Epossidazione di aromatici Idrossilazione di alifatici Epossidazione di alcheni N-dealchilazione O-dealchilazione S-sealchilazione N-ossidazione N-idrossilazione S-ossidazione Ossidazione di aldeidi Aromatizzazione di androgeni • • • • • • • • • • • • • Ossidazione dell’alotano Riduzione dell’alotano Ossidazione dell’arginina Taglio della catena laterale del colesterolo Deidrogenazione Dealogenazione Azoriduzione Deaminazione Desolforazione Idrolisi di ammidi Idrolisi di esteri Perossidazione Denitrazione Più almeno altre 20 gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 25 Reazioni catalizzate dal citocromo P450 • Idrossilazione di atomi di carbonio alifatici o aromatici H N O – Da (S)-mefentoina a 4’-idrossi-(S)mefentoina (CYP2C19) N O CH3 H3C H – Da testosterone a 6α-idrossitestosterone (CYP3A4) OH H H H H O gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 26 13 Reazioni catalizzate dal citocromo P450 • Epossidazione di doppi legami – Da 5-colestene a 5,6β-epossi-5β-colestano NADPH NADP+ H H H H H + O 2 + H+ O H + H2O H • Ossigenazione di eteroatomi, N-idrossilazione – Da amine a idrossilamine – Da omeprazolo to solfone (CYP3A4) gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 27 Reazioni catalizzate dal citocromo P450 • Dealchilazione di eteroatomi – O-dealchilazione (da destrometorfano a destrorfano) – N-demetilazione della caffeina CH3 destrometorfano H N O H3C N caffeina H N H3C O H3C CH3 destrorfano H N H N O N CYP2E1 CYP1A2 O N CH3 CH3 CYP2E1 CYP2D6 N N N H O H O N H3C N N CH3 teobromina N N O N CH3 N N CH3 O CH3 O teofillina H HO gs © 2001-2006 ver 3.1 paraxantina Misure con biomarcatori V 28 14 Reazioni catalizzate dal citocromo P450 • Trasferimento di gruppo per via ossidativa – N, S, X rimpiazzato con O O H 3C O P N +O O O H3C P CH3 F O OO CH3 F gs © 2001-2006 ver 3.1 O S O • Da parathion a paroxon (da S a O) • Attivazione dell’alotano a trifluoroacetilcloruro +O N F O Br F F Cl F CH3 Cl Misure con biomarcatori V 29 Reazioni catalizzate dal citocromo P450 • Scissione di esteri – Scissione del gruppo funzionale con O nel gruppo uscente • Da loratadina a lorantadina desacetilata (CYP3A4, 2D6) • Deidrogenazione – Astrazione di due H con formazione di C=C • Attivazione di acetaminofene al metabolita epatotossico Nacetilbenzochinoneimina OH O H3C O O N H3C N H gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 30 15 La famiglia del Citocromo P450 • Ha molti membri: – 450 nel riso, 57 nell’uomo, 84 nel topo, 10 nella Chlamodymonas • Filogenesi gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 31 Induzione • Meccanismo attraverso il quale uno stimolo esterno alla cellula provoca come risposta la produzione di una o più proteine o, comunque, una attivazione della sintesi proteica: – CYP – HSP – Stress gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 32 16 Un gene + (senso) filamento PROMOTORE GENE introne 1 5’ esone 1 introne 2 esone 2 3’ 3’ esone 3 5’ U (RNA) C T pirimidine ||| || G A purine gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 33 Il DNA fa RNA che fa PROTEINA + (senso) filamento PROMOTORE GENE introne 1 introne 2 5’ 3’ gs © 2001-2006 ver 3.1 esone 1 RNApol esone 2 esone 3 3’ 5’ Misure con biomarcatori V 34 17 Trascrizione + filamento introne 1 introne 2 5’ esone 1 esone 2 3’ esone 3 3’ RNApol Pre-mRNA 5’ 3’ 5’ Il filamento complementare dà una COPIA del GENE. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 35 Splicing 3’ RNApol 5’ 3’ 5’ Pre-mRNA splicing 3’ 5’ mRNA gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 36 18 Traduzione 3’ 5’ mRNA proteina NH2 M S TRADUZIONE t RNA G 3’ 5’ mRNA RNA Ribosomiale gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 37 MAPK gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 38 19 MAPK gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 39 Il paradigma Xenobiotico Attivazione del gene per CYP Metabolismo dello xenobiotico gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V Espressione di CYP… 40 20 CYP1A1 e recettori per idrocarburi aromatici • CYP1A1 non è espressa costitutivamente nel fegato di ratto. • CYP1A1 è indotta da idrocarburi policiclici – Benzo(α)pirene, TCDD (diossine). – Farmaci (omeprazolo, inibitore delle pompe protoniche). • Meccanismo – up-regulation trascrizionale. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 41 Induzione CYP1 gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 42 21 Induzione CYP2-4 (e 7) Regolata da recettori nucleari Regione cardine A/B C Sito di legame del DNA (Zn2+ fingers) D E F Sito di legame del ligando I recettori nucleari sono una superfamiglia di proteine gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 43 Dominio zinc-fingers gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 44 22 Dominio zinc-fingers gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 45 Dominio zinc-fingers gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 46 23 Recettori nucleari I recettori nucleari sono fattori di trascrizioni attivati dai ligandi Ligando NR1 NR2 espressione +/ - Ligando NR NR Elemento di risposta DNA gs © 2001-2006 ver 3.1 GENI Misure con biomarcatori V 47 Recettori nucleari • Recettori per gli steroidi • Recettori per altri ligandi – GR: recettore per i glucocorticoidi – RXR: recettore per X retinoide – MR: recettore per i mineralocorticoidi – RAR: recettore per acido retinoico – AR: recettore per glia androgeni – ER: recettore per gli estrogeni • gs © 2001-2006 ver 3.1 – TR: recettore per l’ormone tiroideo – VDR: recettore per la vitamina D ? • PXR: recettore per X pregnano • CAR: recettore constitutivo attivato Misure con biomarcatori V 48 24 Recettori nucleari • I recettori nucleari si legano ad uno specifico elemento di risposta • Generalmente 2 mezzi siti di legame correlati con AGGTCA • Sono i recettori per gli ormoni steroidei (GR, MR ecc...) AGGACANNNTGTACC TCCTGTNNNACATGG • Si lega come omodimero • Sequenza palindromica imperfetta • Separati da 3bp gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 49 Heat Shock Proteins gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 50 25 Classificazione delle HSP Famiglia Nome hsp 100 hsp 110 hsp 104 grp 100 hsp 90 grp 94 hsp 70 hsc 70 grp 78 mtp 70 hsp60 hsp 58 hsp 40 hsp 90 hsp 70 hsp 60 hsp 40 hsp 30 Piccole hsp Ubiquitina gs © 2001-2006 ver 3.1 hsp 32 hsp 35 hsp 27 hsp42p hsp 10 Ubiquitina Altri nomi Localizzazione subcellulare Livello di espressione Normale Stress hsp 82, HtpG Erp90 hsp 72, DnaK hsp 73 BIP, Kar2p Ssc1p, grp 75 GroEL, cpn60 HuCHa 60 DnaJ, hdj-1 Nucleo/nucleolo citosol ER/Golgi Citosol/nucleo ER Citosol/nucleo Citosol/nucleo ER Mitocondrio Citosol Mitocondrio Citosol/nucleo + + + ++ + ++ ++ + + + + eme-ossigenasi G3PDH α-cristallino Citosol Citosol Citosol/nucleo GroES, cpn-10 Mitocondrio Citosol + + + + + + ++ +++ ++ +++ ++ +++ ? +++ ++ + + ++ ++ ++ ++ ? ++ ++ ++ Misure con biomarcatori V 51 Ruolo costitutivo delle HSP • Le HSP presenti costitutivamente nelle cellule hanno un ruolo fondamentale nei processi fisiologici di ripiegamento trasferimento e degradazione delle proteine. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 52 26 Ruolo citoprotettivo delle HSP • Il ruolo delle HSP indotte in cellule sottoposte ad insulto è quello di minimizzare i danni arrecati ai processi di: – sintesi, – traslocazione – ripiegamento • di proteine cellulari. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 53 Risposta heat shock • La risposta heat shock è un evento comune a tutti gli organismi, caratterizzato dall’aumentata sintesi di HSP in risposta ad un numero molto elevato di stimoli: – aumento di temperatura, – ipossia, – shock osmotico, – metalli pesanti, ischemia, – invecchiamento –… gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 54 27 Turn-over delle proteine • Le proteine cellulari vengono regolarmente degradate e risintetizzate. • Il tempo di semi-vita di un enzima nel fegato di ratto varia da 10 minuti a una settimana. • In media il tempo di semi-vita di una proteina è correlato con il residue N-terminale: – Proteine con N-terminale come Met, Ser, Ala, Thr, Val, o Gly hanno un tempo di semi-vita maggiore di 20 ore. – Proteine con N-terminale Phe, Leu, Asp, Lys, o0 Arg hanno un tempo di semi-vita di 3 minuti o meno. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 55 Turn-over delle proteine • È stato dimostrato che le proteine ricche in Pro (P), Glu (E), Ser (S) and Thr (T), chiamate proteine PEST, sono degradate più rapidamente che le altre proteine. • La degradazione di specifiche proteine può essere regolata: – Negli eucarioti il ciclo cellulare è controllato, alcuni enzimi regolatori del ciclo sono degradati in fasi particolari del ciclo cellulare in risposta a segnali intra o extra-cellulari. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 56 28 Proteolisi: meccanismo generale n n+1 n n+1 R'' O R'' O H H NHR H N NHR Nu+ CR'' R' H N H R' R CR'' H H Nu: H R n n+1 n R'' O H OH R'' H H NHR n+1 O N H H NHR Nu CR'' R' R' H R H H2O R gs © 2001-2006 ver 3.1 H CR'' H Nu: N Misure con biomarcatori V 57 Enzimi proteolici • Classi di enzimi proteolitici: – Proteasi a serina: enzimi digestivi come tripsina, chimotripsina, elastasi... – Differiscono nella specificità del substrato: • Chimotripsina: privilegia il taglio del legame peptidico nel quale l’AA che impegna il C=O ha una catena laterale. • Tripsina: preferisce un AA carico positivamente (Lys o Arg) nella stessa posizione. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 58 29 Enzimi proteolici: proteasi a serina • Il sito attivo (tripsina bovina 3BTK) è fatto da un residuo di serina (Ser195), uno di istidina (His57) e uno di aspartato (Asp102). • Durante la catalisi vi è un attacco nucleofilo del OH della serina sul carbonio del carbonile del legame peptidico che deve essere tagliato. • Durante la reazione un H+ è trasferito dalla serina all’anello imidazolico dell’istidina, l’aspartato forma un legame H con l’istidina. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 59 Enzimi proteolici: proteasi a aspartato • Le – – – – proteasi ad aspartato comprendono: La pepsina (enzima digestivo). Alcune proteasi lisosomiali. L’enzima renale renina. Le proteasi dell’HIV. • Due residui di aspartato sembra partecipino alla catalisi acido/base nel sito attivo. • Un aspartato accetta H+ da una molecola di H2O nel sito attivo che attacca il carbonio carbonilico del legame peptidico. • Simultaneamente l’atro aspartato cede l’H+ all’ossigeno del carbonile del legame peptidico. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 60 30 Enzimi proteolici: metallo proteasi • Appartengono alla classe delle proteasi a Zinco (metalloproteasi): – La carbossipeptidasi (enzima digestivo). – Le metalloproteasi della matrice (collagenasi), coinvolte nella degradazione della matrice extra cellulare durante la crescita dei tessuti. – Una proteasi lisosomiale. • Nel sito attivo è presente uno zinc binding motif, con due residui di istidina il cui imidazolo complessa lo ione Zn++. • Nella catalisi lo Zn++ interagisce con l’ossigeno del C=O promuovendo l’attacco nucleofilo dell’ossigeno di una molecola di acqua nel sito attivo al carbonio del C=O. • Nella carbossipeptidasi un residuo di glutamato facilita la reazione estraendo un H+ dall’acqua. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 61 Enzimi proteolici: proteasi a cisteina • Appartengono alla classe delle proteasi a Cisteine: – La papaina (della Carica Papaya). – Alcune protesi lisosomiali (catepsine). – Le caspasi che si occupano della degradazione delle proteine dell’apoptosi (morte cellulare programmata). • Le proteasi lisosomiali a cisteina sono omologhe alla papaina. Sono una famiglia molto grande con svariata specificità di substrato. • Le caspasi tagliano il lato carbossilico di un aspartato. • Il meccanismo delle proteasi a cisteina si pensa che coinvolga la deprotonazione del SH di una cisteina da parte di un residuo vicino di istidina seguito da un attacco nucleofilo dello zolfo al carbonio carbonilico. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 62 31 Attivazione delle proteasi • Attivazione delle proteasi: • La maggior parte delle protesi sono sintetizzate come proenzimi di maggiori dimensioni. • L’attivazione consiste nella rimozione di un segmento inibitorio nel proenzima. • L’attivazione può avvenire dopo che la proteasi è stata secreta nell’apposito compartimento cellulare o nella matrice extracellulare. • In alcuni casi (attivazione dell’apoptosi) l’attivazione può essere a cascata e portare all’attivazione di proteasi specifiche. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 63 Degradazione delle proteine • Ci sono tre principali sistemi di degradazione delle proteine (nel muscolo): – Ubiquitina-proteosoma • Le proteine sono marcate per la degradazione da unità di ubiquitina. • I proteosoma 20S inattivo viene attivato da una proteina regolatrice diventando proteosoma 26S • Il proteosoma 26S rompe la proteina in peptidi – I peptidi sono scissi in aminoacidi liberi da altri processi nella cellula – Lisosomi • Le proteine entrano nei lisosomi via endocitosi – La catepsina e le proteinasi degradano i legamo peptidici. – Calpaina • Proteasi attivate da calcio nel citosol della cellula – I differenti isomeri sono attivati da differenti concentrazioni di calcio. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 64 32 Sistema Ubiquitina-proteosoma • Ubiquitina: – Le proteine sono marcate per la proteolisi selettiva dall’ubiquitina, una proteina ubiquitaria altamente conservata. – Si forma un legame isopeptidico tra il carbossiterminale dell’ubiquitina e un gruppo NH2 di una lisina della proteina da degradare. • Il processo è ATP dipendente. • Sono coinvolti tre enzimi (E1, E2 e E3). gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 65 Sistema Ubiquitina-proteosoma • Inizialmente il carbossiteminale dell’ubiquitina è legato con un legame tioestere al Ubiquitin-Activating Enzyme (E1) attraverso una reazione ATP dipendente • L’ubiquitina vien quindi trasferita ad un gruppo sulfidrilico del Ubiquitin-Conjugating Enzyme (E2). • Una Ubiquitin-Protein Ligase (E3) trasferisce l’ubiquitina attivata al gruppo ε-amino dui una lisina formando un legame isopeptidico. • Ci sono diverse ligasi dell’ubiquitina che differiscono per la specificità. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 66 33 Sistema Ubiquitina-proteosoma • Più ubiquitine sono legate per formare una catena. • Il carbossiterminale forma un legame con il gruppo ε-amino della Lys48 di una catena adiacente di ubiquitina. H2N gs © 2001-2006 ver 3.1 COOH Misure con biomarcatori V 67 Sistema Ubiquitina-proteosoma • Alcune proteine (per esempio le cicline, coinvolte nella regolazione del ciclo cellulare) presentano una sequenza chiamata destruction box, riconosciuta da un dominio del corrispondente E3. • L’interazione dell’ubiquitina ligasi con il suo bersaglio è regolata , in alcuni casi, dalla fosforilazione della proteina bersaglio e può coinvolgere altre proteine adattatrici. H2N gs © 2001-2006 ver 3.1 COOH Misure con biomarcatori V 68 34 Sistema Ubiquitina-proteosoma • La degradazione selettiva di una proteina avviene nel proteosoma. Un complesso proteico presente nella cellula. • Il core complex del proteosoma, ha un coefficiente di sedimentazione di 20S ed è costituito di 14 subunità di due tipi (α7β7). – Le sette subunità α formano un anello a struttura cilindrica. – Le sette subunità β formano l’anello centrale. α α7β7 {β 1JD2 β α7β7 {α gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 69 Sistema Ubiquitina-proteosoma • Il core complex del proteosoma racchiude una cavità fatta di tre compartimenti collegati da uno stretto passaggio. • L’attività proteasica è associata a tre delle subunità β ognuna con differente specificità per il substrato. α β β α gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 70 35 Sistema Ubiquitina-proteosoma 1. Una subunità β ha una attività simile alla chimotripsina con preferenza per Tyr o Phe come AA al carbonile del legame peptidico. 2. Una subunità β ha una attività simile alla tripsina con preferenza per Arg o Lys al carbonile del legame peptidico. 3. Una subunità β ha una attività post-glutamil con preferenza per glutamato o altro residuo acido. • • Non sono coinvolti residui di cisteina o serina. L’attività idrolasica del proteosoma costituisce una famiglia di proteasi a treonina. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 71 Sistema Ubiquitina-proteosoma • • • • Nella struttura del core complex del proteosoma non ci sono apparenti aperture verso l’esterno. Si è postulata l’interazione con un cap complex che apra il passaggio verso l’esterno. È stato cristallizzato il core complex 20S del proteosoma con il cap complex 11S. L’interazione del cap complex 11S altera la conformazione del dominio N-terminale delle subunità α del core complex permettendo l’accesso dall’esterno. 1FNT gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 72 36 Determinazione • Western blotting: – anticorpo specifico – sviluppo di chemioluminescenza Ab2° ECL Ab1° Proteina LUCE Nitrocellulosa Lastra fotografica gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 73 Acetilcolinesterasi gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 74 37 Aceticolina O H3C O CH3 + CH3 N CH3 • È stato il primo neurotrasmettitore ad esser identificato – da Otto Loewi nel 1921, attraverso la stimolazione del nervo vago nelle rane che, era noto, causa il rallentamento del battito cardiaco. – Raccolse il fluido circostante il cuore stimolato e lo applicò ad un cuore non stimolato osservandone il rallentamento. – Attribuì l’effetto ad un prodotto chimico che in seguito identificò come acetilcolina. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 75 Recettori per l’acetilcolina • Due tipi: • Recettori Nicotinici – Canali ionici, – Rispondono rapidamente ed hanno effetto eccitatorio – Bloccati dal curaro • Recettori Muscarinici – – – – Accoppiati alla proteina G Rispondono lentamente Possono essere sia eccitatori che inibitori Bloccati da atropina e scopolamina. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 76 38 Il recettore nicotinico per l’acetilcolina gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 77 Recettori muscarinici O H3C • Acetilcolina H3C N + O H3C CH3 4.44 A • Muscarina H3C H3C gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V OH CH3 N + O CH3 78 39 Recettori nicotinici O H3C H3C • Acetilcolina N + O H3C CH3 5.59 A • Nicotina N N CH3 gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 79 Aceticolinesterasi (AChE) EC 3.1.1.7 • È l’enzima che si occupa di degradare l’acetilcolina per evitare una sovrastimolazione. CH3 + CH3 O CH3 + CH3 N H3C O gs © 2001-2006 ver 3.1 CH3 N HO Misure con biomarcatori V CH3 O +H C 3 O 80 40 Siti di azione degli insetticidi neurotossici Canali del Ca++, Calmodulina ATPase Na+ Ca++ K+ Corpo cellulare del neurone (organoclorurati, piretrine) gs © 2001-2006 ver 3.1 Cl- (GABA) Sinapsi (anticolinesterasici) Misure con biomarcatori V 81 Trasmissione del segnale nervoso + + Na+ — — + — — — + — + Colinesterasi + + + — +— + — — K+ + — + — + + — + — — — + + + — + — +— — + — + gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 82 41 Trasmissione del segnale nervoso + — + Na+ — + — + — — Colinesterasi + — + —+ + +— + — — + — K+ + — + + — + — — — — + + + — + — +— — + — + gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 83 Trasmissione del segnale nervoso + + Na+ — — + — — — + No Colinesterasi — + + + + +— + — — — — K+ + + — + + — + — — — + + + — + — +— — + — + gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 84 42 Aceticolinesterasi gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 85 Acetilcolina e acetilcolinestrasi Glu327 - His440 Ser200 + HO H3C H3C + CH3 gs © 2001-2006 ver 3.1 CH3 O N O Misure con biomarcatori V 86 43 Acetilcolina e acetilcolinestrasi Glu327 - His440 Ser200 + O HO O H3C H3C CH3 + N CH3 gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 87 Colina e acetilcolinestrasi acetilata Glu327 - His440 Ser200 + O O H3C H3C N + CH3 OH CH3 gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 88 44 Colina e acetilcolinestrasi acetilata Glu327 - His440 Ser200 + HO H3C H3C N O OH + O CH3 gs © 2001-2006 ver 3.1 CH3 Misure con biomarcatori V 89 Acetilcolinestrasi fosforilata Glu327 - His440 Ser200 + O H3 C H3C P O RO RO + N CH3 gs © 2001-2006 ver 3.1 CH3 O Complesso stabile che può essere scisso da ossime O Misure con biomarcatori V 90 45 Acetilcolinestrasi fosforilata Glu327 - His440 Ser200 + O O P P O RO RO RO RO OH OH N R Complesso stabile che può essere scisso da ossime N R gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 91 Acetilcolinestrasi fosforilata Glu327 - His440 Ser200 + O P O RO HO HO OH N R gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V R La dealchilazione porta alla stabilizzazione del complesso 92 46 Agenti anticolinestrasici • Inizialmente sviluppati come arma chimica • Gas nervini CH CH O 3 – Tabun, Sarin N H3C O O H3C 3 O P CN H3C H O H3C P F • Insetticidi organofosfati O N – Malathion, parathion + O CH3 O H3C P S O S H3C O O H3C O CH3 O O O P S O CH3 gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 93 Acetilcolinesterasi e Sarin gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 94 47 Tossicità selettiva CH3 O Malathion P H3C S O S O O H3C CH3 O O VELOCE (mammiferi) LENTO (insetti) VELOCE (insetti e mammiferi) CH3 Malaoxon O P H3C O O S H3C METABOLITI INATTIVI O VELOCE (mammiferi) LENTO (insetti) O O CH3 O gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 95 Inibitori dell’aceticolineterasi R R H3C Y P Y z Struttura generale • R = catena idrocarburica • Z = gruppo organico • Y=SoO H3C S O O NO2 P O Parathion • Organofosfati – Poco costosi e poco tossici verso le specie non bersaglio. – Più solubili in acqua del DDT, più degradabili e meno persistenti. – Veleno del SN. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 96 48 Degradazione del parathion® O + N O O N + O H3C OH O P O O H3C P S O parathion H3C O P O O CH3 O O paraoxon CH 3 CH3 O dietilfosfato O + O N OH 4-nitrofenolo NH2 H3C O S H 3C O P O OH P O dietiltiofosfato CH3 SO idrochinone OH CH3 NH2 aminoparathion HO 4-aminofenolo gs © 2001-2006 ver 3.1 OH Misure con biomarcatori V 97 Determinazione • L’enzima idrolizza l’acetilcolina in colina e acido acetico rimuovendola così dalle fessure sinaptiche H3C N + CH3 O H3C CH 3 H3C N + OH + H3C CH 3 O CH3 O O • Viene valutata l’idrolisi dell’acetiltiocolina (metodo di ELLMAN) H3C N + H3C CH 3 gs © 2001-2006 ver 3.1 CH3 S O H3C N + H3C CH 3 Misure con biomarcatori V SH + CH3 O O 98 49 Reazione di ELLMAN H3 C H3 C + SH H3C CH 3 S + O S N H3C CH 3 O N N N S + O O S O N + O O O O O ditiobisnitrobenzoato, DTNB N SH O O Assorbimento a 412 nm gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 99 GSH • Il glutatione è un tripeptide formato da glicina, cisteina, acido glutamico. SH O O N H O NH2 GLU gs © 2001-2006 ver 3.1 H N O O O CYS Misure con biomarcatori V GLY 100 50 Coniugazione con il GSH • Due tipi di reazione con il GSH – Spiazzamento di alogeni, solfati, solfonati, fosfati, nitrogruppi – Il glutatione viene addizionato a doppi legami attivati (epossidi) come nella sintesi delle prostaglandine. • Substrati: – Idrofobici che contengono un elettrofilo – Possono reagire non enzimaticamente gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 101 Coniugazione SH O O RX + N H O NH2 O H N O O glutatione S-transferasi EC 2.5.1.18 NH2 HX + O O H N O O N H O O S R gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 102 51 Glutatione S-transferasi – EC 2.5.1.18 gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 103 Glutatione S-transferasi EC 2.5.1.18 (1A0F) gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 104 52 Glutatione S-transferasi • Glutatione-S-transferasi microsomiale e citosolica • Almeno quattro classi di glutatione-Stransferasi (α, β, γ, δ), diversi isoenzimi inducibili. CH3 – Induttori (3-metilcolantrene, fenobarbital, corticosteroidi, anti-ossidanti) – La sovraespressione porta a resistenza (insetti DDT resistenti, piante resistenti all’atrazina, cellule tumorali resistenti alla chemioterapia) gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 105 Eliminazione dei composti coniugati con il GSH • Escrezione dei glutatione-coniugati: – Intatti nella bile – Convertiti in acido mercapturico nei reni ed escreti nelle urine • γ-glutamiltransferasi, aminopeptidasi M gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 106 53 γ-glutamiltransferasi SR O O O H N + O N H O H2O O NH2 γ -glutamiltransferasi EC 2.3.2.2 O O SR NH2 + N H O O O NH2 Glutamato R-S-alanilglicina gs © 2001-2006 ver 3.1 O O Misure con biomarcatori V 107 Metallotioneine gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 108 54 Metallotioneine • Le metallotioneine (MT) sono peptidi e proteine ubiquitarie a basso peso molecolare ad alto contenuto in aminoacidi solforati e metalli. • Si ipotizza che giochino un ruolo: – nella fissazione dei metalli in tracce (Zn++, Cu++), – nel controllare la concentrazione di questi ioni, – nella regolazione dei flussi degli ioni ai distretti cellulari, – nella neutralizzazione dei metalli tossici (Cd++, Hg++) e nella protezione dallo stress indotto dai metalli. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 109 Distribuzione • Le metallotioneine sono presenti in tutti gli organismi: animali, vegetali e microrganismi. • Negli animali queste proteine posseggono polimorfismo genetico e sono abbondanti nei tessuti parenchimali (fegato, rene, pancreas e intestino). • La loro concentrazione dipende da specie, tessuto, età, sesso ed altri fattori non ancora completamente identificati • Nonostante che le metallotioneine siano proteine citoplasmatiche si sono trovate accumulate nei lisosomi e nel nucleo. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 110 55 Trasporto di metallotioneine • Schema ipotetico del trasporto di metalli pesanti attraverso l’epitelio branchiale di molluschi bivalvi. – M: metalli in traccia; – MT: metallotioneine. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 111 Turnover delle metallotioneine • Schema del turnover di MT in cellule di molluschi bivalvi (Isani et al., 2000). – M: Metalli; – MTF: Fattori di Trascrizione; – MTI: Inibitori di Trascrizione. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 112 56 Classificazione • Il nome deriva dal fatto che hanno un alto contenuto di zolfo e metalli. Tale contenuto varia a secondo del metallo (fino ad oltre il 20% in peso) • Nei mammiferi sono caratterizzate da un peso molecolare di 6000-7000 Da, contengono da 60 ad 68 amino acidi di cui 20 Cys che legano 7 equivalenti di ione metallico bivalente. Mancano di aminoacidi aromatici. Tutte le Cys sono in forma ridotta e sono coordinate con ioni metallici. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 113 Classificazione – Le metallotioneine • La superfamiglia delle the metallotioneine è definita come quella che comprende i peptidi che assomigliano alla metallotioneina renale equina che ha le seguenti caratteristiche: – Basso peso molecolare – Composizione: • Alto contenuto in Cys, basso contenuto in aromatici. • Sequenza caratteristica. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 114 57 Classificazione – Le famiglie • Una famiglia di metallotioneine è caratterizzata da una particolare sequenza ed è legata ad una o più specie. – I membri di una determinata famiglia appartengono solo a quella e si pensa siano correlati da un punto di vista evoluzionistico – Ogni famiglia è identificata da un numero e dalla specie. – Per esempio: Famiglia 1: vertebrati. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 115 Classificazione • Le sottofamiglie – Si definiscono sottofamiglie di metallotioneine quegli insiemi di proteine che oltre i caratteri propri delle famiglie condividono un insieme di caratteri più stringenti. – Per esempio: m1, m2… • I sottogruppi – Un sottogruppo rappresenta un insieme di sequenza correlate filogeneticamente. In un albero filogenetico rappresentano un ramo. – Per esempio: m2U2 = MT-2 di ungulati, sottogruppo della sottofamiglia m2. • Le isoforme – Sono i membri di sottogruppi, sottofamiglie e famiglie. – Per esempio MT-1E umana. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 116 58 Classificazione – I clan • Un clan è un insieme di proteine che dividono delle caratteristiche non già definite: – – – – – Struttura, Proprietà termodinamiche, Affinità per i metalli Proprietà funzionali … gs © 2001-2006 ver 3.1 Sequenza Misure con biomarcatori V 117 Famiglia Caratteristiche Sottofamiglie K-x(1,2)-C-C-x-C-C-P-x(2)-C 1 vertebrati Da 60 a 68 AA; 20 Cys (21 in un caso), 19 totalmente conservate; due domini strutturali, contenenti 9 e 11 Cys che legano 3 e 4 ioni bivalenti rispettivamente. Il gene è composto di 3 esoni, 2 introni m1, m2, m3, m4, m, a, a1, a2, b, ba, t C-x-C-x(3)-C-T-G-x(3)-C-x-Cx(3)-C-x-C-K 2 molluschi Da 64 a 75 AA; da 18 a 23 Cys, minimo 13 totalmente conservate; due domini mo1, mo2, mog, mo P-[GD]-P-C-C-x(3,4)-C-x-C 3 crostacei da 58 a 60 AA; esistono varianti con e senza Met Nterminale; 18 Cys totalmente conservate; due domini, ognuno con 9 Cys che legano 3 ioni bivalenti c1, c2, c 4 echinodermi Da 64 a 67 AA; 20 Cys ; due domini strutturali, contenenti 9 e 11 Cys che legano 3 e 4 ioni bivalenti rispettivamente e1, e2 Da 40 a 43 AA; 10 Cys conservate d1, d2 62 e 74 AAs; 18 Cys, contiene una Tyr n1, n2 P-D-x-K-C-[V,F]-C-C-x(5)-C-x-Cx(4)-C-C-x(4)-C-C-x(4,6)-C-C C-G-x(2)-C-x-C-x(2)-Q-x(5)-Cx-C-x(2)D-C-x-C 5 ditteri K-C-C-x(3)-C-C 6 nematodi una sequenza 7 ciliati C-G-C-S-x(4)-C-x-C-x(3,4)-C-xC-S-x-C 8 funghi I C-X-K-C-x-C-x(2)-C-K-C 105 AA, 31 Cys, multiplo pattern CCC, una Tyr ci Da 25 a 33 AA; 7 Cys f1 11 funghi IV Da 55 a 56 AA; 9 Cys; un pattern CCC; contiene His e Phe f4 K-C-A-C-x(2)-C-L-C 14 procarioti Da 53 a 56 AAs; 9 Cys; una Tyr, una His; contine residui non comuni p [YFH]-x(5,25)-C-[SKD]-C-[GA][SDPAT]-x(0,1)-C-x-[CYF] 15 piante Da 45 a 84 AAs; due regioni ric he di Cys (dominio 1 e dominio 3) separate da una regione con poche Cys (dominio 2) p1, p2, p2v, p3, pec, p21 gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 118 59 Struttura • Nonostante che le sequenze aminoacidiche siano diverse hanno caratteristiche strutturali simili: – – – – Forma a manubrio, Due domini, Diverse unità tetraedriche Me(II)-Cys, Tutte le Cys coinvolte nel legame con lo ione metallico – Pressoché assente la struttura secondaria. gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 119 Cu-Metallotioneina da Saccharomyces Cerevisiae (1AQR) gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 120 60 Cu-Metallotioneina da Saccharomyces Cerevisiae (1AQR) gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 121 Cd-Metallotioneina da Riccio di mare Subunità α (1QJH) gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 122 61 Cd-Metallotioneina da Riccio di mare Subunità α (1QJH) gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 123 Cd-Metallotioneina da Riccio di mare Subunità β (1QJL) gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 124 62 Cd-Metallotioneina da Riccio di mare Subunità β (1QJL) gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 125 Cd-Metallotioneina umana (1MHU) gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 126 63 Cd-Metallotioneina umana (1MHU) gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 127 Cd-Metallotioneina di Callinectes sapidus (1DMF) gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 128 64 Cd-Metallotioneina di Callinectes sapidus (1DMF) gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 129 Cd-Metallotioneina di Callinectes sapidus (1DMF) gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 130 65 Struttura genica gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 131 Aspetti funzionali • La più importante delle funzionalità delle metallotioneine è la loro inducibilità da una serie di agenti e condizioni: – – – – – – Ioni metallici d10 (Cu++, Zn++, Cd++, Tl+, Pb++…) Ormoni Citochine Fattori di crescita Promotori tumorali Stress • È dimostrato il loro aumento fisiologico durante la proliferazione cellulare: MT-Zn++ + Apo-Zinc-fingers → MT + Zn++- Zinc-fingers gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 132 66 Determinazione • Le MT sono proteine ricche in cisteina con affinità elevata per i metalli pesanti • La concentrazione di MT è quantificata valutando il contenuto in Cys • Reazione di ELLMAN (standard GSH) gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 133 GSH • Il glutatione è un tripeptide formato da glicina, cisteina, acido glutamico. SH O O N H O NH2 GLU gs © 2001-2006 ver 3.1 H N O O O CYS Misure con biomarcatori V GLY 134 67 Reazione di ELLMAN R S O S N O N RS + S O O S O N + O O O O O ditiobisnitrobenzoato, DTNB N SH O O Assorbimento a 412 nm gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 135 Grazie a… • … Bruna Gravina, Irene Tamburin, Christian Asirelli, Federico Caselli, Francesco Ferretti, Giuseppe Giammanco che, nell’ambito delle loro tesi di laurea in Scienze Ambientali, hanno prodotto testi, immagini, figure e diapositive, utilizzate in questa presentazione. Giorgio Sartor gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 136 68 Referenze sul WEB … • • • • • • • Vie metaboliche – KEGG: http://www.genome.ad.jp/kegg/ • Degradazione degli xenobiotici: http://www.genome.ad.jp/kegg/pathway/map/map01196.html Struttura delle proteine: – Protein data bank (Brookhaven): http://www.rcsb.org/pdb/ – Hexpasy • Expert Protein Analysis System: http://us.expasy.org/sprot/ • Prosite (protein families and domains): http://www.expasy.org/prosite/ • Enzyme (Enzyme nomenclature database): http://www.expasy.org/enzyme/ – Scop (famiglie strutturali): http://scop.berkeley.edu/ Enzimi: – Nomenclatura - IUBMB: http://www.chem.qmw.ac.uk/iubmb/ – Proprietà - Brenda: http://www.brenda.uni-koeln.de/ – Expasy (Enzyme nomenclature database): http://www.expasy.org/enzyme/ Database di biocatalisi e biodegradazione: http://umbbd.ahc.umn.edu/ Citocromo P450: http://www.icgeb.org/~p450srv/ Metallotioneine: http://www.unizh.ch/~mtpage/MT.html Tossicità degli xenobiotici: Agency for Toxic Substances and Disease Registry http://www.atsdr.cdc.gov gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 137 …e naturalmente • Questo ed altro materiale può essere trovato visitando il sito: http://www1.ambra.unibo.it/giorgio.sartor/ • Il materiale di questa presentazione è di libero uso per didattica e ricerca e può essere usato senza limitazione, purché venga riconosciuto l’autore usando questa frase: • Materiale ottenuto dal Prof. Giorgio Sartor Università di Bologna a Ravenna Corso di Laurea in Scienze Ambientali gs © 2001-2006 ver 3.1 Misure con biomarcatori V 138 69