UNIVERSITÀ DEGLI STUDI DI PAVIA DIPARTIMENTO DI FISICA CORSO DI LAUREA IN FISICA Simulazione di un modello realistico per la plasticità sinaptica tra le fibre muscoidi e la cellula dei granuli Relazione per la laurea di Leonardo Daniel Herbas Burgos Supervisore: Chiar.mo Prof. D’Angelo Egidio Anno Accademico 2015/2016 Simulazione di un modello realistico per la plasticità sinaptica tra le fibre muscoidi e la cellula dei granuli Abstract Simulazione computerizzata di un modello realistico per la plasticità sinaptica usando il framework di simulazione NEURON e il linguaggio di programmazione Python. La cellula dei granuli cerebellare viene simulata usando un modello multi compartimentale che prevede tutti i componenti della cellula e la corretta distribuzione dei meccanismi cellulari per il funzionamento della cellula secondo i risultati esperimentali ottenuti negli ultimi decenni. I modelli di plasticità simulati prevedono la plasticità a breve e lungo termine mediante la simulazione dei recettori AMPA e NMDA e dei meccanismi presinaptici di rilascio del neurotrasmettitore, includendo anche i meccanismi di produzione di ossido nitrico, un’importante messaggero retrogrado, che ha un ruolo importante nel potenziamento a lungo termine. Questo lavoro prevede una prima parte introduttiva che riassume gli argomenti necessari, come i metodi matematici, il modello di Hodgkin-Huxley e il modello di Rall, utili per affrontare la seconda parte del lavoro, che tratta in dettaglio il lavoro di simulazione della cellula e le sinapsi. Il risultato principale di questo lavoro è un modello generale della plasticità a lungo termine. Basato in un’insieme di meccanismi di controllo (che includono i recettori NMDA, canalli di calcio, riserve di calcio, produzione di NO) e parammetri di controllo (calcio e NO) il modello riesce a riprodurre la plasticità sinaptica indotta da un complesso insieme di input (che includono la modulazione della durata dei treni, la frequenza e la fase). 2 Simulation of a realistic model for the synaptic plasticity between the mossy fiber and the granule cell Abstract Computer simulation of a realistic model for the synaptic plasticity using the framework NEURON and the programming language Python. The cerebellar granule cell has been simulated by using a multicompartmental model that reproduces every single component of it and the correct distribution of the mechanism for its operations, according to the results obtained in recent decades. The simulated plasticity models provide the long-term and short-term plasticity by the simulation of the AMPA and NMDA receptors and the presynaptic mechanism involved in the release of neurotransmitter, including also the nitric oxide production mechanism acting as a retrograde messenger which has an important role in the long-term potentiation. This work provides a first introductory part that summarize the required arguments, as the mathematical tools, the Hodgkin-Huxley model and the Rall’s model, needed to address the second part of the work, which go in details about the simulation of the cell and synapses. The main result of this work is a general model of long-term synaptic plasticity. Based on a set of control mechanisms (including NMDA receptors, Ca channels, calcium stores, NO production) and of control parameters (calcium and NO) the model can reproduce synaptic plasticity induced by a complex set of input patterns (including modulation of input burst duration, frequency and phase). 3 4 Indice I Aspetti introduttivi 3 1 Definizioni 1.1 Il neurone . . . . . . . . . . . . . 1.1.1 L’assone . . . . . . . . . . 1.1.2 I dendriti . . . . . . . . . 1.1.3 Le sinapsi . . . . . . . . . 1.1.4 Canali ionici . . . . . . . 1.2 Plasticità sinaptica . . . . . . . . 1.2.1 Plasticità a breve termine 1.2.2 Plasticità a lungo termine . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5 5 6 7 7 8 9 10 10 2 Il cervelletto 2.1 La corteccia cerebellare . 2.1.1 Cellule di Purkinje 2.1.2 Cellule di Golgi . . 2.1.3 Cellule dei granuli 2.1.4 Cellule a canestro 2.1.5 Cellule stellate . . 2.2 Fibre afferenti . . . . . . . 2.2.1 Fibre rampicanti . 2.2.2 Fibre muscoidi . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 13 13 15 15 16 16 17 17 17 17 . . . . . . 19 21 21 25 26 29 30 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3 Modelli matematici e sistemi dinamici 3.1 Modelli concettuali e modelli computazionali . . . . 3.2 Rappresentazione matematica dei modelli concettuali 3.3 Schema cinetico di una reazione . . . . . . . . . . . . 3.4 Discretizzazione di una equazione differenziale . . . . 3.5 Integrazione numerica . . . . . . . . . . . . . . . . . 3.6 Ottimizzazione . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 4 Modello di Hodgkin-Huxley e teoria di Rall 33 4.1 Modello di Hodgkin-Huxley . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 33 4.1.1 Il modello . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 33 5 4.2 4.1.2 Simulazione . . . . . . . Modello di Rall . . . . . . . . . 4.2.1 Equazione del cavo . . . 4.2.2 Modelli compartimentali . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 37 40 40 44 5 NEURON e Python 45 5.1 NEURON . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 45 5.2 Python . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 46 5.2.1 NEURON in Python . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 46 II Plasticità sinaptica nella cellula dei granuli e la fibra muscoide 47 6 Modello del granulo 6.1 Cellula dei granuli . . . . . . . . . . . . . . . 6.2 Modelli matematici per i diversi meccanismi . 6.2.1 Meccanismo di dispersione LKG1 . . . 6.2.2 Meccanismo di dispersione di GABAA 6.2.3 Dinamiche del primo ordine del Ca . . 6.2.4 Dinamiche dei canali Ca . . . . . . . . 6.2.5 Dinamiche dei canali K . . . . . . . . 6.2.6 Dinamiche dei canali Na . . . . . . . . 6.3 Simulazione della cellula dei granuli . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 49 49 50 51 51 52 52 52 55 56 7 Modelli per le sinapsi 7.1 Il glomerulo . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.2 Trasmissione sinaptica e plasticità . . . . . 7.2.1 Ipotesi quantale . . . . . . . . . . . 7.2.2 Plasticità sinaptica . . . . . . . . . . 7.2.3 Modelli di plasticità a breve termine 7.3 I recettori sinaptici . . . . . . . . . . . . . . 7.3.1 AMPA . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.3.2 NMDA . . . . . . . . . . . . . . . . 7.3.3 GABA . . . . . . . . . . . . . . . . . 7.4 Ossido nitrico come messaggero retrogrado 7.5 LTP, LTD e dipendenza dal calcio . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 61 61 61 62 63 64 66 66 68 69 71 74 . . . . . . . . . . . 8 Simulazione completa della cellula granulare 8.1 Topologia del modello . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 8.2 Schema generale del modello per la plasticità sinaptica . 8.3 Distribuzione delle conduttanze . . . . . . . . . . . . . . 8.4 Simulazione della risposta postsinaptica di fronte ad un molo presinaptico . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6 79 . . . 79 . . . 80 . . . 80 sti. . . 82 8.5 Discussione e conclusioni . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Appendices 90 93 A Proprietà non sinaptiche della cellula 95 A.1 Canali ionici . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 95 A.2 Risposta della cellula a stimoli contemporanei . . . . . . . . . 98 Bibliografia 100 7 8 Elenco delle figure 1.1 Rappresentazione di un neurone . . . . . . . . . . . . . . . . . 6 2.1 Corteccia cerebellare. Fonte: Anatomy of the Human Body, Henry Gray 1918 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 14 3.1 3.2 3.3 4.1 4.2 4.3 4.4 4.5 4.6 4.7 4.8 Schema cinetico per la reazione A → B. . . . . . . . . . . . . A sinistra: funzione ex/2 + 2cos(x) e le sue derivate analitica, numerica con errore O(∆x) e con errore O(∆x2 ). Le linee delle derivate sono praticamente sovrapposte. A destra: differenza tra i due metodi. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . A sinistra: funzione ex/2 + 2cos(x) e l’integrale della sua derivata analitica. Le due curve sono praticamente sovrapposte. A destra: la loro differenza. Notare che ad un certo punto l’errore diventa nullo, per poi aumentare ancora. . . . . . . . Circuito equivalente per il modello di Hodgkin-Huxley. . . . . Valori all’equilibrio degli stati n, m e h in funzione del potenziale di membrana. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Andamento nel tempo del potenziale di membrana e gli stati dei canali ionici quando la cellula non è eccitata. . . . . . . . A sinistra: conduttanza dei canali ionici durante un AP. Al centro e destra: Andamento nel tempo del sistema quando viene eccitato da una corrente di 5µA/cm2 a 40 ms. . . . . . A sinistra: Andamento nel tempo del sistema quando viene eccitato da una corrente di 10µA/cm2 a 40 ms. A destra: Somma temporale degli EPSC generato da pulsi di 40Hz con ciclo di lavoro di 10% e corrente di pico di 55µA/cm2 . . . . . Circuito equivalente di un segmento di cavo dendritico. . . . . Soluzioni dell’equazione del cavo finito con un impulso al punto x=1. A sinistra il potenziale in funzione dello spazio. A destra, il potenziale in funzione del tempo per qualche punto nel cavo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Modello compartimentale di un albero dendritico. Ogni rettangolo rappresenta un compartimento. . . . . . . . . . . . . 9 26 27 30 34 36 38 39 39 40 43 44 6.1 6.2 6.3 6.4 6.5 6.6 7.1 7.2 7.3 7.4 7.5 7.6 Fibre parallele. Si possono vedere i piccoli granuli nella parte inferiore e i loro assoni che ascendono per poi dividersi e formare sinapsi con le cellule di Purkinje (viste trasversalmente). Fonte: Cunningham’s Textbook of anatomy; Daniel John Cunningham - 1913. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Schema cinetico a 13 stati per i canali di sodio. . . . . . . . . Andamento nel tempo del potenziale della membrana in funzione della corrente dell’elettrodo. La corrente viene iniettata a 40ms. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Correnti ioniche totali misurate nel soma di K e nel assone di Na con uno stimolo di 10pA. . . . . . . . . . . . . . . . . . . A sinistra: Concentrazione di Ca interno nel soma. A destra: Flusso di corrente di Ca nel soma. . . . . . . . . . . . . . . . A sinistra: Tempo del primo AP generato in funzione della corrente. A destra: frequenza degli impulsi generati in funzione della corrente. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Simulazione con metodo Monte Carlo del rilascio di neurotrasmettitore secondo l’ipotesi quantale. A sinistra: potenziali postsinaptici in miniatura. Si possono osservare picchi in corrispondenza dei multipli del quanto fondamentale 0.4mV. A destra, la distribuzione del potenziale dovuta a le diverse incertezze nelle misure. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . A sinistra: Simulazione del modello di Tsodyks-Markram con un segnale presinaptico a 100Hz. I parametri sono τf = 10.8 ms, τt = 3.0 ms, τR = 35.1 e p = 0.4. A destra: Guadagno in funzione della frequenza per una sinapsi dominata STD (parametri come nel grafico a sinistra) e una sinapsi dominata STF. I parametri per la sinapsi STF sono: τf = 750.0 ms, τt = 50.0 ms, τR = 20.0 e p = 0.15 . . . . . . . . . . . . . . . . Simulazione del modello di STP presinaptico per attività a raffica (theta burst) con frequenza di raffica di 300Hz e frequenza di treni di 10Hz. In alto lo stato X. In basso lo stato Y. Notare come c’è un mix di potenziamento (seconda spike nei treni) e di depressione (secondo treno). . . . . . . . . . . . Schema cinetico a 3 stati per il recettore AMPA. . . . . . . . Simulazione dello schema cinetico per il recettore AMPA. A sinistra: EPSC generato. Notare la depressione, dovuta anche in parte alla fatica sinaptica, ma sopratutto per via dell’accumulo dello stato D, il che rende il recettore meno sensibile a stimoli di glutammato. A destra: i tre stati del recettore AMPA durante uno stimolo di 100Hz presinaptico in condizioni normali di potenziale di membrana. . . . . . . . . . . . . . . . Schema cinetico a 5 stati per il recettore NMDA. . . . . . . . 10 50 56 57 57 58 59 63 66 67 67 68 69 7.7 7.8 7.9 7.10 7.11 7.12 7.13 8.1 8.2 8.3 8.4 8.5 8.6 8.7 Simulazione dello schema cinetico per il recettore NMDA. A sinistra: confronto tra la corrente generata dall’attività presinaptica nel recettore NMDA quando il potenziale della membrana è di -70mV (in blu) e -40mV(in verde), cambiamento dovuto al blocco di Mg2+ . A destra: i cinque stati del recettore NMDA durante uno stimolo di 100Hz presinaptico in condizioni normali di potenziale di membrana. . . . . . . . . Schema cinetico a 5 stati per il recettore GABA. . . . . . . . Schema cinetico per la produzione di NO. . . . . . . . . . . . Simulazione dello schema cinetico per l’enzima NOS. A sinistra: velocità di produzione di NO. A destra: NO prodotto per molecola di NOS. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Dati ricavati dagli esperimenti in D’Errico et al 2009 e best fit del modello scelto. Il potenziamento dell’efficacia sinaptica è in funzione della frequenza del segnale presinaptico. . . . . . Schema cinetico per l’accumulo di un ipotetico stato in funzione del Ca2+ . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Simulazione del flusso di Ca2+ quando si varia il tempo tra lo stimolo del recettore NMDA e la generazione di un AP postsinaptico. In su: stato O del recettore NMDA. Questo è dipende solo dall’attività presinaptica. Al centro: AP generato da un flusso di corrente di 40 pA durante 2 ms. In giù: convoluzione della la corrente generata dal recettore. Questa corrente viene integrata per ottenere la carica attraverso il recettore durante lo stimolo, il che permette il calcolo del numero di ioni di Ca2+ . Per ∆t positivi si dovrebbe avere una linea orizzontale. La linea che cade è dovuta alla limitatezza dell’intervallo d’integrazione. . . . . . . . . . . . . . . . . . . In alto: schema delle relazioni tra i diversi meccanismi nel modello della plasticità sinaptica. In basso: modello completo dei fenomeni sinaptici. Fonte: D’Angelo E., Prestori I., Mapelli L., in preparation. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Simulazione della risposta della cellula di fronte ai tre protocolli presinaptici: TBS, HF, LF. . . . . . . . . . . . . . . . . . EPSC generati per i protocolli TBS e HF. . . . . . . . . . . . Accumulo di glutammato diffuso per i protocolli TBS e LF. . Aumento dell’ampiezza degli EPSC per uno stimolo TBS con raffiche di 10 impulsi ogni 250ms. . . . . . . . . . . . . . . . . Variazione dell’efficacia sinaptica nel tempo. . . . . . . . . . . Stati del meccanismo di rilascio di trasmettitore. In ordine dall’alto verso il basso: probabilità di rilascio P, Trasmettitore disponibile X, trasmettitore rilasciato Y, trasmettitore ricuperato Z. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 11 70 70 71 72 75 75 77 81 83 84 84 85 86 87 8.8 8.9 Produzione di ossido nitrico. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Simulazione della curva di guadagno per il protocolo di accoppiamento per la STDP a 10Hz in funzione della fase tra il segnale presinaptico e lo stimolo nel soma. . . . . . . . . . . . 8.10 Comparazione di simulazioni del STDP a differente frequenza del protocollo di accoppiamento rispetto alla fase tra il segnale presinaptico e lo stimolo postsinaptico. . . . . . . . . . . . . 8.11 In alto: Dipendenza della plasticità sinaptica dal calcio. Fonte: D’Angelo E., Prestori i, Mapelli L., in preparation. Data from D’Errico et al, 2009 Gall et al., 2005. In basso: simulazione della plasticità in funzione del numero di spikes (rappresentato come il tempo per un segnale di 100Hz) con sovraposta la linea di massimo e minimo del potenziamento per il STDP con livelli simili di calcio. La discrepanza tra il modello e le osservazioni (in alto) potrebbe essere dovuta a la mancanza dei recettori metabotropici mGluR. . . . . . . . A.1 Correnti ioniche di potassio nel soma (nel hillock e assone per i canali KV). . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . A.2 Correnti ioniche per il canale di potassio controllato dal calcio e quello di calcio controllato dalla tensione della membrana. . A.3 Effetti di diverse conduttanze dei canali KCA nel potenziale della membrana. A sinistra: mancanza di canali KCA nei dendriti. A destra: eccesso di canali KCA nei dendriti. . . . . A.4 Risposta della cellula quando vengono stimolati contemporaneamente uno o più dendriti. . . . . . . . . . . . . . . . . . . 12 87 89 90 91 96 97 98 99 Introduzione Il presente lavoro consiste nella recostruzione realistica e la simulazione computerizzata della cellula dei granuli cerebellare e la sinapsi formata nel glomerulo con le fibbre muscoidi e la modellazione dei modi di plasticità presenti in questa sinapsi, insieme ai meccanismi di trasmissione sinaptica, sia diretti che retrogradi. Il lavoro di simulazione è stato eseguito usando il framework NEURON (Carnevale and Hines 2006[4]) e il linguaggio di programazione Python. Questa tesi è composta di due parti. Una prima parte introduttiva, con i concetti e metodi necessari per lo studio delle neuroscienze, come lo sono le equazioni differenziali e sistemi dinamici e i modelli di Hodgkin-Huxley e il modello compartimentale di Rall oltre a includere i termini e il contesto della simulazione, sopratutto per il contenuto di termini biologici che non sono comuni in altre discipline. La seconda parte consiste nella vera simulazione dei meccanismi cellulari che fanno funzionare il granulo come una cellula nervosa. La simulazione del neurone segue un modello compartimentale con una topologia derivata dal lavoro di Diwakar et al (2009)[7], i meccanismi per i canali ionici derivarti principalmente dal lavoro di D’Angelo et al. (2001)[6] e i meccanismi sinaptici in Nieus et al. (2006)[27]. La distribuzione dei meccanismi cellulari per ogni compartimento è stato un lavoro di ottimizzazione automatico e successivamente un “fine tunning” manuale per riprodurre il funzionamento della cellula seguendo l’evidenza esperimentale accumulata in diversi deceni di studi. Gran parte del lavoro di ricostruzione è stato l’inclussione dei meccanismi di produzione di ossido nitrico e il suo ruolo nella plasticità sinaptica, e la ricostruzione di un modello di plasticità a lungo termine dipendente dalla concentrazione di calcio dentro della cellula. Il codice sorgente della simulazione è disponibile in https://github. com/leonardodaniel/granule_cell. Il codice della simulazione è in Python, che controlla il nucleo di NEURON nell’eseguire l’integrazione delle equazioni differenziali per riccavare le dinamiche temporali di ogni meccanismo cellulare. Nel codice sorgente sono inclussi anche molti esempi di simulazione numerica per singoli meccanismi usando metodi molto semplici e l’uso della libreria Numpy per la manipolazione di tensori e Seaborn/Matplotlib per le visualizzazioni che sono presenti lungo questa tesi. 13 14 Parte I Aspetti introduttivi 15 Capitolo 1 Definizioni Il proposito di questo capitolo è di introdurre in modo veloce alcuni concetti e terminologia basica per affrontare il resto di questo lavoro. 1.1 Il neurone Il neurone è l’unità basica del sistema nervoso. Sono delle cellule capaci di creare connessioni tra di loro e di inviare e ricevere segnali. Queste sono composte da un corpo principale chiamato soma e da questo diramano i dendriti che raccolgono i segnali da altri neuroni e l’assone che invia i segnali ad altri neuroni. I segnali generati dai neuroni sono prodotti per da ioni che attraversano la membrana cellulare e quindi sono di natura elettrica, il che rende i neuroni a sua volta elettricamente eccitabili. Il tipo di segnale è diverso comunque dagli segnali elettronici nei conduttori, dove gli elettroni si muovono lungo il conduttore da un polo positivo a uno negativo di una batteria. Per il neurone invece, il potenziale si propaga nella membrana come un’onda sulla superficie e i poli della batteria sono dentro e fuori della cellula. Quando il neurone è a riposo, cioè, non viene stimolato da alcuna corrente, la differenza di potenziale tipica tra l’interno e l’esterno della membrana è di -70mV. A seconda di come il neurone viene stimolato, si può parlare di depolarizzazione, quando il potenziale della membrana aumenta, o iperpolarizzazione, quando questo diminuisce. Sotto certe condizioni si può scatenare una forte depolarizzazione della membrana e poi una veloce repolarizzazione, evento denominato potenziale d’azione (AP d’ora in poi1 ). Al massimo del AP, il potenziale della membrana può arrivare anche a 50mV. Il soma, essendo la parte principale del corpo cellulare del neurone, contiene il nucleo e produce le proteine e membrane necessarie per la cellula. Alcune proteine possono essere prodotte anche nei dendriti, ma non nell’assone. 1 Action Potential 17 Figura 1.1: Rappresentazione di un neurone I neuroni quasi sempre hanno un solo assone, che è specializzato nel portare gli impulsi lontano dal soma per arrivare alle sinapsi che trasmettono il segnale alla cellula successiva. Gli AP vengono in effetti prodotti nel punto di connessione tra l’assone e il soma, chiamato cono di emergenza2 , grazie ad una particolare distribuzione dei canali ionici. 1.1.1 L’assone L’assone è la parte del neurone che porta il segnale elettrico verso altri neuroni, muscoli o ghiandole. I nervi che escono dall’encefalo sono attualmente degli assoni e possono estendersi anche fino al metro di lunghezza. L’assone possiede canali ionici, principalmente di sodio e potassio, che permettono la generazione e propagazione degli AP. A volte gli assoni hanno un ricoprimento chiamato guaina mielinica, che permette la rapida propagazione del segnale senza molte perdite. L’assone finisce con le sinapsi, che inviano il segnale prodotto dal neurone ad altri neuroni. 2 A volte chiamerò questo componente anche hillock, dal suo nome in inglese, per brevità. 18 1.1.2 I dendriti I dendriti sono delle fibre che partono dal soma e si diramano a forma di albero. Questi raccolgono il segnale da altri neuroni mettendosi a contatto con le sinapsi mediante delle spine nella superficie dei dendriti. A volte, la complessità del albero dendritico permette di fare computazioni con i segnali raccolti. 1.1.3 Le sinapsi I segnali generati non si propagano direttamente al neurone successivo, ma sono inviati mediante le sinapsi. Le sinapsi possono essere elettriche o chimiche. Le prime, rare nel sistema nervoso, inviano il segnale elettrico dalla cellula presinaptica mediante un flusso diretto di ioni che si diffonde per via della diversa concentrazione tra la giunzione sinaptica, mentre le seconde rilasciano dei chimici, i neurotrasmettitori, che vengono catturati nella cellula postsinaptica da particolari recettori, generando una piccola polarizzazione della membrana postsinaptica. Nelle sinapsi chimiche (d’ora in poi solo sinapsi), il terminale assonico presinaptico ha delle vescicole che contengono il neurotrasmettitore. Quando avviene un AP nel neurone presinaptico, nel terminale assonico viene indotto un influsso di ioni Ca2+ . Questo a sua volta causa che le vescicole si fondano con la membrana cellulare, evento chiamato esocitosi, rilasciando il neurotrasmettitore contenuto in esse nello spazio tra le due cellule, chiamata fessura sinaptica. I recettori nella cellula postsinaptica cattura le molecole rilasciate, attivando dei canali che permettono il passaggio di ioni nel terminale postsinaptico. A seconda del tipo di ione questo può causare una depolarizzazione oppure un’iperpolarizzazione. Se il neurone postsinaptico viene depolarizzato per via di un segnale presinaptico, questo potenziale viene denominato EPSP3 . Invece se viene iperpolarizzata si denomina IPSP4 . Può anche succedere che la parte postsinaptica invii dei segnali alla cellula presinaptica. Questo tipo di segnale retrogrado può essere una piccola molecola, come l’ossido nitrico (NO) o monossido di carbono (CO), oppure degli ormoni peptidici e possono produrre cambiamenti nel funzionamento delle sinapsi. Neurotrasmettitori I neurotrasmettitori sono delle sostanze contenute in vescicole nel terminale presinaptico che vengono rilasciate dalle sinapsi quando un AP arriva a queste mediante la fusione delle vescicole con la membrana, cioè, l’esocitosi. 3 4 Exitatory postsynaptic potential: potenziale postsinaptico eccitatorio Inhibitory postsynaptic potential: potenziale postsinaptico inibitorio 19 Il loro compito è di inviare il segnale alla cellula postsinaptica. Questi una volta rilasciati possono essere ricevuti direttamente dai recettori nella parte postsinaptica, oppure possono diffondersi nella fessura sinaptica e legarsi con recettori distali. 1.1.4 Canali ionici I canali ionici sono dei canali presenti nella superficie della membrana cellulare dei neuroni che può permettere sotto certe condizioni il passaggio di ioni attraverso la membrana. In effetti, nella membrana cellulare esistono delle proteine chiamate pompe ioniche, responsabili del trasporto ionico attivo, che fanno si che diversi ioni (principalmente Ca2+ , Na+ e K+ ) abbiano concentrazioni diverse rispetto all’interno e l’esterno della cellula. Questa diversa concentrazione da origine ad una differenza di potenziale tra i due lati della membrana, descritta dalla legge di Nerst: RT E= ln zF [Q]out [Q]in dove R è la costante dei gas perfetti, T la temperatura assoluta, z è la carica del ione, F la costante di Faraday e [Q] è la concentrazione dello ione in questione. In un neurone, differenti ioni contribuiscono al potenziale della membrana. La combinazione di questi potenziali quando il neurone è a riposo viene denominato potenziale a riposo5 . I canali ionici possono aprirsi per via di una variazione nel potenziale della membrana, possono essere attivati dal calcio, oppure quando le molecole che formano i canali legano qualche molecola messaggera. Questa apertura causa che gli ioni aventi differente concentrazione tra l’interno e l’esterno della cellula possano diffondersi, generando un cambiamento a sua volta del potenziale della membrana mediante il trasporto passivo di ioni. Le particolari dinamiche di questi canali rendono possibile la generazione di un AP e la loro propagazione. Quando i canali ionici sono attivati da una molecola messaggera, questi vengono denominati recettori. Di particolare importanza in questa tesi sono i seguenti: Recettore AMPA Sono dei recettori che vengono attivati legando una molecola di AMPA6 , analogo artificiale del glutammato7 . Questo recettore cattura il neurotra5 Resting potential α-amino-3-hydroxy-5-methyl-4-isoxazolepropionic acid 7 Anione dell’acido glutammico, un aminoacido non essenziale. 6 20 smettitore direttamente, quindi genera una risposta rapida tra il segnale presinaptico e l’attivazione del recettore. Il recettore AMPA è ionotropico, cioè il legame con i suoi agonisti provoca una modifica della forma facendolo diventare un canale aperto per il transito di specifici ioni. Recettore NMDA Sono dei recettori che vengono attivati invece legando una molecola di NMDA8 . Anche questo tipo di ricettore è ionotropico. L’attivazione di questo recettore permette il passaggio non selettivo di ioni con un potenziale di Nerst di circa 0 mV. Mentre l’attivazione del recettore dipende dalla presenza di glutammato, il flusso di corrente dipende anche dal potenziale della membrana. Ioni di magnesio Mg2+ all’esterno della cellula possono legarsi a siti specifici del recettore, bloccando il passaggio di ioni. La depolarizzazione della membrana rimuove il blocco di Mg2+ . Recettore GABA Sono dei recettori che vengono attivati legando una molecola di GABA9 ed è il principale recettore di tipo inibitorio del sistema nervoso. Esistono recettori GABA di due tipi: GABAA di tipo ionotropico, e di tipo GABAB , di tipo metabotropico, cioè, recettori che sono legati indirettamente con i canali ionici nella membrana cellulare per via di una cascata di reazioni intracellulari. 1.2 Plasticità sinaptica La plasticità sinaptica semplicemente è il cambiamento nel tempo della forza tra le connessioni sinaptiche, cioè, il cambiamento della risposta postsinaptica rispetto allo stimolo presinaptico. L’idea che cambiamenti nell’efficienza delle sinapsi nei diversi circuiti neurali possa mediare la memorizzazione delle informazioni acquisite durante l’apprendimento ha una lunga storia. Ipotesi riguardo la crescita di connessioni neurali nel cervello e le circostanze in cui questo fenomeno accade risalgono a Ramon y Cajal[19] e, nella metà del ventesimo secolo a Hebb[26]. La prima prova esperimentale emerse da studi di assuefazione e di sensibilizzazione nel mollusco marino Aplysia. La scoperta del potenziamento a lungo termine (LTP10 ) diede maggiore supporto all’ipotesi che questo abbia a che fare con i processi di memorizzazione e apprendimento, essendo che 8 N-methyl-D-aspartate γ-aminobutyric acid 10 Long-term potentiation 9 21 il LTP fu scoperto per prima volta nell’ippocampo, una zona del cervello implicata nella memoria, come rivelarono studi sull’amnesia[34]. Per cui, lo studio dei LTP e LTD11 diventa centrale per capire come funziona la memoria. Ci sono molti meccanismi che creano dei cambiamenti nelle connessioni sinaptiche tra i neuroni. Ad esempio cambiamenti nella quantità di neurotrasmettitore rilasciato dalla parte presinaptica e cambiamenti nell’efficacia dei recettori postsinaptici o anche cambiamenti intrinseci delle proprietà della cellula. 1.2.1 Plasticità a breve termine Molte forme di plasticità a breve termine, con durate da pochi millisecondi a qualche minuto, sono state osservate virtualmente in ogni sinapsi esaminata in diversi organismi, sia in invertebrati fino i mammiferi[36]. Si crede che questo tipo di plasticità possa svolgere ruoli importanti nella adattamenti a breve termine dei segnali sensoriali, cambiamenti transitori di stati comportamentali, e forme di memoria di breve durata. Molte forme di plasticità sinaptica a breve termine sono innescati da brevi sequenze di attività che causano un accumulo transitorio di calcio nei terminali nervosi presinaptici. Questo aumento di calcio presinaptico a sua volta provoca cambiamenti nel rilascio di neurotrasmettitore modificando direttamente i processi biochimici che stanno alla base della esocitosi delle vescicole sinaptiche. Solitamente questo produce un potenziamento della quantità di neurotrasmettitore rilasciato ad ogni impulso della cellula presinaptica. Altro fenomeno legato alla plasticità a breve termine è l’esaurimento del neurotrasmettitore nella parte presinaptica dovuto ad una attività persistente. Questo produce l’esaurimento di neurotrasmettitore più velocemente di quanto ne sia ricuperato nelle vescicole sinaptiche. Quindi, è evidente che in base all’attività si ha una competizione tra potenziamento e depressione a breve termine. Questo potrebbe suggerire che ci sia una finestra o banda di frequenze dell’attività presinaptica che rafforza o indebolisce le connessioni sinaptiche. 1.2.2 Plasticità a lungo termine Questo tipo di plasticità ha una durata maggiore rispetto alla plasticità a breve termine (potenzialmente nell’ordine delle ore) e viene considerato come il meccanismo primario dell’apprendimento e la memoria[20]. Questo cambiamento può essere un potenziamento (LTP) oppure una depressione (LTD) delle connessioni sinaptiche ed è stato identificato che ha componenti presinaptiche e postsinaptiche. Cambiamenti nel numero di recettori e le loro 11 Long-term depression: depressione a lungo termine 22 proprietà producono cambiamenti a lungo termine nella parte postsinaptica, mentre cambiamenti nella probabilità di rilascio di neurotrasmettitore producono cambiamenti nella plasticità presinaptica. Altri tipi di potenziamento possono accadere per cambiamenti delle funzioni cellulari, causando un cambiamento del potenziale di soglia per la generazione di AP. Molta evidenza è stata accumulata riguardo all’importanza del recettore NMDA nella plasticità a lungo termine. Questo recettore, come detto prima, ha un blocco di Mg2+ che limita il flusso di corrente postsinaptica. Quando la cellula viene depolarizzata mediante un AP, questo rimuove il blocco, il che permette a gli impulsi presinaptici di generare una corrente maggiore attraverso il recettore NMDA. Questo permette un flusso di Ca2+ che attraverso altre reazioni genera cambiamenti plastici a lunga durata. Questo meccanismo si crede a la base della detezione di coincidenza, che sta alla base della teoria hebbiana dell’apprendimento. 23 24 Capitolo 2 Il cervelletto Questo lavoro di tesi si concentra su una delle cellule nel cervelletto: i granuli. Questo breve capitolo serve a dare un poco di contesto al ruolo dei granuli nella rete cerebellare. Struttura Il cervelletto presenta uno strato di sostanza grigia superficiale, detta corteccia cerebellare, di forma irregolare a causa di numerosi solchi ad andamento prevalentemente trasversale. Al profondo della corteccia è presente la sostanza bianca che forma, al centro, il corpo midollare da cui dipartono tralci di sostanza che seguono i ripiegamenti della grigia superficiale e formano l’arbor vitae. Nel profondo del corpo midollare sono situati quattro nuclei, detti nuclei intrinseci. Funzione Anche se i movimenti muscolari possono essere iniziati anche senza un cervelletto, l’esecuzione corretta dei movimenti richiedono di un cervelletto. Questo funziona come un organo di controllo che rende accurati e coordinati i movimenti volontari. Questo permette anche di generare meccanismi di adattamento, come il controllo della posizione e l’equilibrio mediante un meccanismo di feedback. Il cervelletto è anche coinvolto nell’apprendimento motorio e si crede anche in certe funzioni cognitive. 2.1 La corteccia cerebellare La corteccia cerebellare possiede una superficie pari alla metà di quella del cervello ma contiene un numero di neuroni maggiori, benché il suo peso sia dieci volte inferiore. Ma a differenza della corteccia cerebrale, che ha una struttura complessa e intrecciata, la corteccia cerebellare ha una struttura molto regolare e parallela. 25 Figura 2.1: Corteccia cerebellare. Fonte: Anatomy of the Human Body, Henry Gray 1918 Nella corteccia cerebellare sono presenti sei tipi di neuroni: • cellule di Purkinje • cellule del Golgi • granuli • cellule a canestro • cellule fusiformi La corteccia cerebellare è composta da tre strati: • strato molecolare • strato delle cellule di Purkinje • strato granulare 26 Lo strato molecolare è costituito dai dendriti delle cellule di Purkinje e di Golgi, dalle fibre parallele e dalle fibre rampicanti. Risulta povero di corpi cellulari, costituiti solamente dalle cellule a canestro, le cellule stellate e le cellule fusiformi. L’arborizzazione dendritica delle cellule di Purkinje si estendono verso la regione corticale e risultano appiattite per via dello sviluppo in senso trasversale rispetto alla lunghezza delle lamelle cerebrali, a differenza delle cellule del Golgi che estendono le loro ramificazioni sia in senso trasversale che longitudinale, andando ad invadere anche parte del territorio occupato dalle cellule di Purkinje. Le fibre parallele nascono dalla biforcazione a T di numerosi assoni dei granuli che, una volta ascesi nello strato molecolare, divergono dando vita alle fibre stesse. Le fibre rampicanti, invece, risultano essere le terminazioni delle fibre olivo-cerebrali. Entrambe le fibre incontrano e traggono sinapsi con le cellule e i dendriti presenti nello strato molecolare. Lo strato delle cellule di Purkinje contiene i corpi cellulare delle cellule di Purkinje e di Golgi. Lo strato granulare contiene i corpi cellulari dei granuli e parte del loro assone; i corpi cellulari, i dendriti basali e gli assoni delle cellule del Golgi; le ramificazioni terminali delle fibre muscoidi e parte delle fibre rampicanti (fibre afferenti). 2.1.1 Cellule di Purkinje Le cellule di Purkinje sono tra le cellule più grosse del sistema nervoso. Sono disposte ad intervalli regolari e possiedono un albero dendritico fittamente arborizzato che si estende fino lo strato molecolare dove forma migliaia di sinapsi con le fibre parallele originate dai granuli e con le fibre rampicanti. Ricevono sinapsi inibitorie dalle cellule stellate, dalle cellule a canestro e di rami ricorrenti di assoni di altre cellule di Purkinje. L’albero dendritico delle cellule di Purkinje è caratteristicamente limitato ad una sottile lamina di tessuto perpendicolare all’asse maggiore della lamella e gli assoni di queste si dirigono verso lo strato dei granuli per poi penetrare nella sostanza bianca. Sono dei neuroni inibitori, la cui funzione è di modulare l’attività dei nuclei intrinseci del cervelletto. 2.1.2 Cellule di Golgi Le cellule del Golgi dette cellule stellate interne o grandi granuli sono neuroni che si trovano nella zona superficiale dello strato dei granuli, vicini ai corpi cellulari delle cellule del Purkinje. Possiedono un albero dendritico dall’ampia arborizzazione che si estende significativamente, a differenza di quello delle cellule del Purkinje, sia sul piano longitudinale che trasversale 27 con proporzioni simili. L’albero dendritico si porta sino allo strato molecolare. L’arborizzazione assonica delle cellule del Golgi si estende nello strato dei granuli e forma sinapsi dette glomeruli cerebrali con le fibre muscoidi. Le fibre parallele contraggono sinapsi con il loro albero dendritico, ma possono ricevere anche rami ricorrenti dalle cellule di Purkinje, da fibre rampicanti o da fibre muscoidi. Alcune cellule, presentano un’arborizzazione dentritiche anche nello strato granulare dove entra a far parte dei glomeruli cerebrali e riceve sinapsi eccitatorie dalle fibre muscoidi. 2.1.3 Cellule dei granuli Le cellule dei granuli sono le cellule più numerose del cervelletto. Si stima siano in numero di 46 miliardi e in rapporto di 3000:1 con le cellule del Purkinje. Sono neuroni piccoli, con corpi tondeggianti dai nuclei di 5-8 µm di diametro. Si trovano all’interno dello strato dei granuli che deve il suo nome a loro. Ognuno emette da tre a cinque dendriti terminanti con un caratteristico artiglio e prendono contatto con le terminazioni a grappolo delle fibre muscoidi formando, insieme agli assoni delle cellule di Golgi, i glomeruli cerebrali. Le cellule dei granuli possiedono un solo assone che attraversa la corteccia cerebrale sino allo strato molecolare dove si ramifica a forma di T, formando le fibre parallele. Le fibre parallele decorrono parallelamente all’asse maggiore della lamella cerebrale in cui si trovano per diversi millimetri e sono costellate di strutture globulari che rappresentano le sinapsi con le spine dendritiche delle cellule del Purkinje, con le cellule stellate esterne, con le cellule a canestro e con quelli delle cellule del Golgi. Ogni arborizzazione dendritica può essere incrociata da circa 250000 fibre parallele anche se non è detto che ogni fibra parallela contragga sinapsi con tutti i dendriti che incontra. Le cellule dei granuli, a differenza delle altre popolazioni, sono gli unici neuroni eccitatori e nelle loro sinapsi rilasciano L-glutammato. 2.1.4 Cellule a canestro Le cellule a canestro possiedono un pirenoforo che si trova nella parte più profonda dello strato molecolare. Sono interneuroni inibitori che possiedono un’arborizzazione dendritica moderatamente ramificata su cui formano sinapsi alcune fibre parallele, essa è perpendicolare all’asse maggiore della lamella, una geometria che seguono anche i dendriti delle cellule del Purkinje. Le cellule a canestro ricevono sinapsi assosomatiche anche da rami ricorrenti degli assoni delle cellule del Purkinje, dalle fibre rampicanti e dalle fibre muscoidi. Gli assoni delle cellule a canestro sono caratterizzati da un rapporto inversamente proporzionale tra il loro diametro e la distanza dal pirenoforo; si trovano in profondità nello strato molecolare, alcuni loro rami 28 decorrono perpendicolarmente e altri parallelamente all’asse della lamella in cui si trovano, ed attraversano le arborizzazioni di almeno una decina di cellule di Purkinje raggiungendo una lunghezza di qualche millimetro. Sono state cosı̀ chiamate perché i rami collaterali dei loro assoni si affiancano ai dendriti delle cellule del Purkinje per poi formare una rete di fibre a canestro attorno ai corpi e all’assone di queste cellule. 2.1.5 Cellule stellate Le cellule stellate sono piccoli neuroni dalla forma stellata che si trovano nello strato molecolare della corteccia cerebellare. Possiedono un’arborizzazione dendritica scarsamente ramificata che si sviluppa in un piano perpendicolare all’asse delle lamelle, mentre i loro assoni decorrono parallelamente all’asse maggiore della lamella in cui si trovano. Gli assoni formano sinapsi con l’albero dendritico delle cellule del Purkinje. I dendriti delle cellule stellate ricevono terminazioni sinaptiche eccitatorie dalle fibre parallele delle cellule dei granuli. 2.2 Fibre afferenti Sono denominate fibre afferenti gli assoni dei neuroni sensoriali. Nella corteccia cerebellare queste possono essere di due tipi: le fibre rampicanti e le fibre muscoidi, entrambi eccitatorie. 2.2.1 Fibre rampicanti Le fibre rampicanti sono fibre mieliniche eccitatorie che originano dal nucleo olivare inferiore e raggiungono il cervelletto tramite il fascio olivocerebellare. Per ogni neurone del nucleo olivare inferiore ci sono circa dieci cellule di Purkinje, e quindi ogni fibra olivocerebellare dà luce a circa dieci fibre rampicanti. Le fibre risalgono attraverso la sostanza bianca dove gettano numerosi collaterali per i nuclei intrinseci. Arrivate nella corteccia distribuiscono collaterali per le cellule dei canestri e stellate per terminare poi nello strato molecolare dove si avvolgono intorno ai dendriti delle cellule del Purkinje contraendo con essi un gran numero di sinapsi (anche qualche migliaio). 2.2.2 Fibre muscoidi Le fibre muscoidi sono fibre mieliniche che originano dai fasci spinocerebellari, trigeminocerebellari, reticolocerebellari e pontocerebellari. Nella sostanza bianca emettono numerosi rami collaterali per i nuclei intrinseci e una volta giunte nello strato dei granuli perdono la guaina mielinica per terminare espandendosi in rosette o grappoli. 29 Queste terminazioni varicose, insieme ai dendriti dei granuli e agli assoni delle cellule del Golgi, entrano a far parte dei glomeruli cerebellari nei quali le rosette occupano una posizione centrale. Le fibre muscoidi non raggiungono lo strato molecolare, ma si fermano a quello dei granuli, deputando agli assoni dei granuli la trasmissione del segnale fino allo strato più esterno. 30 Capitolo 3 Modelli matematici e sistemi dinamici Un modello matematico è una rappresentazione di un sistema usando il linguaggio della matematica, con lo scopo di poter spiegare il sistema e studiare gli effetti dei differenti componenti con gli strumenti della matematica, e a volte anche poter fare predizioni del suo comportamento. Molto frequentemente, quando si è interessati all’evoluzione temporale di un sistema si ricorre a sistemi di equazioni differenziali che descrivono l’evoluzione di ogni variabile del sistema. Oppure quando la differenza tra gli intervalli temporali è finita si ricorre a sistemi di equazioni alle differenze finite. In ogni caso, la descrizione del sistema è data da un’espressione che collega lo stato passato del sistema con la variazione delle variabili presenti o la differenza tra lo stato presente e lo stato immediatamente futuro nel caso discreto. Un semplice esempio di sistema dinamico differenziale può essere la catena di decadimenti di un nucleo radioattivo. Prendiamo ad esempio l’uranio U-238, che mediante emissione α si trasforma in Torio Th-234. Poi questo, per decadimento β si trasforma in Protactinio Pa-234. Il primo decadimento ha vita media di 4.5 miliardi di anni, mentre il secondo solo di 25 giorni. Chiamando la quantità di nuclei di uranio A, quelli di torio B e quelli di protactinio C si può scrivere il sistema di equazioni differenziali dA A =− dt τU dB A B = − dt τU τT h dC B C = − dt τT h τP a (3.1) A parole, questo sistema indica che si perde U-238 con il classico modello di decadimento esponenziale. Poi, i nuclei di U-238 si trasformano in Th31 236, cioè si vanno ad aggiungere al numero di nuclei della variabile B, che poi decadono in Pa-234. Identico ragionamento per il Pa-234. Questa semplice rappresentazione delle dinamiche del sistema nasconde una serie di interessanti informazioni, anche senza risolvere il sistema. Per esempio, il sistema non è chiuso. Se si sommano le derivate delle tre variabili si ottiene dA dB dC C + + =− dt dt dt τP a questo era da aspettarselo, infatti il P-234 può continuare a decadere, cosi che il numero totale di nuclei considerando solo questi tre elementi non è costante e diminuisce con il tempo. Un’altra informazione è che il sistema è in equilibrio solo quando non ci sono più nuclei. La condizione d’equilibrio richiede che le derivate siano nulle, è questo è vero solo se A è nullo e di conseguenza anche B e C. Risolvendo il sistema di ottengono le dinamiche delle diverse variabili, cioè, la loro dipendenza dal tempo e dalle altre variabili in generale. Sistemi semplici possono anche essere risolti analiticamente usando i metodi di soluzioni dei sistemi di equazioni differenziali. In questo caso, il sistema di prima può essere posto in termini di un operatorie differenziale usando il linguaggio dell’algebra lineare: con D : R3 → R3 dv D(v) = = Av dt −kU 0 0 0 M = kU −kT h 0 kT h −kP a (3.2) e A v= B C dove le componenti k nella matrice M sono i reciproci dei tempi di decadimento τ . Questo sistema si risolve diagonalizzando l’operatore D, descritto dalla matrice M . Infatti, sia Q la matrice di cambiamento di base che rende diagonale la matrice M , si ha che: v̇ = M v → v˙0 = Qv̇ = QM v = QM Q−1 Qv e quindi M → M 0 = QM Q−1 v → v 0 = Qv 32 (3.3) Questo rende il sistema di equazioni differenziali un sistema disaccoppiato, cioè, che le dinamiche delle nuove variabili A0 , B 0 e C 0 non dipendono dalle altre, ma solo dal tempo. Chiaramente, si può ritornare alle variabili originali una volta risolto il sistema con la trasformazione inversa v 0 → v = Q−1 v 0 Diventa comunque complicato risolvere questo tipo di sistemi analiticamente per un numero di variabili anche non molto grande. Altro problema è che in genere i sistemi non sono lineari come questo esempio. Cosi si ricorre all’integrazione numerica dei sistemi di equazioni differenziali e la simulazione computerizzata diventa uno strumento prezioso nello studio dei sistemi dinamici. 3.1 Modelli concettuali e modelli computazionali Un sistema biologico, come ad esempio una cellula, consiste di milioni di molecole che interagiscono tra di loro, e ognuna di queste molecole è composta potenzialmente di centinaia di atomi che danno le proprietà di queste molecole mediante gli stati energetici degli elettroni. Quindi non è fattibile lo studio esatto di un sistema di questo tipo, data l’enorme complessità e le limitate risorse di calcolo. Bisogna quindi trovare un compromesso tra quali variabili catturare e che comportamento si vuole studiare mediante una semplificazione de sistema o un’astrazione dei suoi componenti. Il modello cosi semplificato, deve essere testato per verificare che è un modello che rappresenta la realtà, mediante la comparazione del comportamento del modello, rispetto a dati ricavati sperimentalmente. Come detto prima, lo studio di questo modello concettuale deve essere realizzato mediante la simulazione computerizzata. Quindi bisogna tradurre il modello concettuale a un modello computazionale che sia possibile studiare al computer. Questo porta ulteriori complicazioni per il fatto che il computer è un calcolatore discreto, cioè per ogni ciclo del processore questo esegue un’istruzione. Evidentemente non è possibile simulare un sistema continuo nel tempo usando un computer, e per la stessa ragione, neanche continui nello spazio. Quindi bisogna trovare il modo di rendere discreti nel tempo e nello spazio i possibili modelli che hanno delle variabili continue, senza alterare eccessivamente risultati ottenuti. 3.2 Rappresentazione matematica dei modelli concettuali Prima ancora di procedere all’implementazione di un modello computazionale, bisogna trasformare il modello concettuale in un sistema di equazioni che 33 ne descrivono il comportamento. A questo punto, del modello concettuale dovrebbero essere noti i seguenti fatti: • Quali sono le variabili nel sistema • Cosa, come e dove si muove • Cosa, come e in cosa si trasforma Per spiegare questo piccolo framework facciamo due semplici esempi. Il primo è l’oscillatore armonico. Consideriamo un piccolo corpo legato ad una molla. Tirando del corpo per allungare leggermente la molla e rilasciandolo questo comincia un moto oscillatorio. Consideriamo questo moto il più lineare possibile. Osservando il sistema si può notare che l’impulso del corpo aumenta quando si avvicina a la posizione che era a riposo e diminuisce quando si allontana da questo punto, cosi abbiamo un sistema a due variabili: posizione e impulso. Dall’osservazione precedente sappiamo che esiste uno scambio o una trasformazione tra la velocità e la posizione, presse come variabili in uno spazio astratto. Quello che viene perso dalla variabile posizione viene guadagnato dalla variabile velocità. Siccome questa variazione non dipende dal valore della posizione ma dalla distanza dal punto d’equilibrio, postuliamo che il cambiamento nel tempo dell’impulso sia proporzionale alla variazione spaziale della posizione al quadrato: dp ∂(x2 ) = −k1 = −2k1 x dt ∂x Allo stesso modo, la variazione della posizione è proporzionale dall’impulso e quindi lo stato nello spazio astratto con coordinate x e p si muove lungo nella direzione x in proporzione a p. Quando questo è massimo, la posizione cambia velocemente e viceversa. Quindi si può scrivere un’equazione del tipo dx = k2 p dt Queste due equazioni insieme si possono scrivere come una sola d2 x 2k1 =− x = −ω 2 x 2 dt k2 che è la ben nota equazione dell’oscillatore armonico, ricavata senza nessun richiamo esplicito dei principi della meccanica classica. Il secondo esempio è una reazione di dissociazione. Ad esempio l’acqua, che è composta da due atomi di idrogeno e uno di ossigeno. Questa molecola ha una probabilità di dissociarsi, cioè di formare due ioni, uno di H+ e altro del radicale HO− . Quindi abbiamo tre variabili, anche se una non è indipendente, dato che per ogni molecola d’acqua vengono prodotti H+ e HO− in uguale quantità. Cosi il sistema si riduce a due variabili. L’acqua 34 si può dissociare spontaneamente con una piccola probabilità in questi due radicali e a sua volta i due radicali si ricombinano formando acqua. Cosi, nel framework precedente si ha che la variabile A che rappresenta la molecola di acqua, si trasforma nella variabile B che rappresenta uno dei radicali. Quello che viene perso dal primo viene guadagnato dal secondo e viceversa. Questo permette di scrivere due equazioni: dA = −kA A + kB B 2 dt dB = kA A − kB B 2 dt (3.4) Nella natura questo sistema è in equilibrio, cioè si dissociano lo stesso numero di molecole di quelle che si ricombinano. Questo permette di trovare la proporzione tra i radicali e le molecole d’acqua come 2 kA B2 = =K A2 kB da questa formula si può ricavare l’equilibrio degli ioni nell’acqua come KW = KA2 = B KW = K[H2 O][H2 O] = [H+ ][HO− ] dove il valore di KW a 25◦ C è di 1.0x10−14 . Comunque, è importante notare che i modelli devono essere creati con l’evidenza esperimentale e devono essere testati con dati reali. Se ad esempio, nel modello dell’oscillatore armonico, invece di considerare la distanza come x2 si usava il modulo, si poteva comunque arrivare a scrivere un modello differenziale, ma che non rappresenta la realtà fisica. A questo punto potrebbe entrare in gioco l’astrazione del sistema. Consideriamo un sistema dinamico descritto da molte particelle, potenzialmente dell’ordine del numero di Avogadro. Questo sistema sarebbe intrattabile anche numericamente. Ma se si considerano i punti come una distribuzione nello spazio delle fasi1 e pensiamo a questa distribuzione come un fluido, lo spostamento del fluido con densità ρ in una zona dello spazio delle fasi che descrive il sistema produce un flusso j, che può essere rappresentato mediante un’equazione di continuità: ∂ρ + ∇ · j = 0. ∂t Allo stesso modo, la trasformazione di un composto in un’altra può essere studiato mediante la stessa equazione di continuità, a patto che siano 1 Spazio astratto con tante dimensioni come il numero di variabili del sistema. Utile per rappresentare con un solo punto nello spazio l’intero stato del sistema. Non necessariamente è lo spazio fisico. 35 rappresentate le concentrazioni e il flusso di materiale che si trasforma. Ma essendo che in una reazione il materiale di una specie non si conserva perché si trasforma in altra specie, bisogna aggiungere un termine che indica il materiale che viene perso o guadagnato, in quanto l’equazione di continuità descrive delle quantità che vengono conservate. Quindi si ha un’equazione del tipo ∂ρ + ∇ · j = f (ρ, x, t). (3.5) ∂t Il flusso j che descrive il trasporto di materiale da un punto ad un’altro nello spazio delle fasi, sia questo spontaneo, oppure forzato, può essere decritto in una maniera più semplice. Se si considera che in un punto A ci sia una certa concentrazione di materiale, mentre che nel punto B infinitamente vicino ci sia un’altra concentrazione, ci sarà un passaggio spontaneo di materiale dal punto di maggior concentrazione a quello di minore concentrazione. Questo fenomeno può essere giustificato da un punto di vista matematico, richiedendo che la funzione di concentrazione sia continua2 , ma se considera che nelle reazioni chimiche di trasporto, i composti sono formate da molte molecole, si può considerare il processo di diffusione per moti termici casuali. Pensiamo a due compartimenti che hanno un diverso numero di particelle che hanno una piccola probabilità di cambiare compartimento. Evidentemente, in media, il compartimento con più particelle invia più materiale a quello con meno particelle fino arrivare ad un equilibrio. Ma a questo scopo ci basterà la motivazione matematica. Cosı̀, abbiamo una differenza di concentrazione tra due punti infinitamente vicini. Questo può essere descritto come: lim ∆x→0 ρ(x + ∆x) − ρ(x) dρ = ∆x dx Assumendo che il flusso sia proporzionale alla differenza di concentrazione tra due punti, e quindi al gradiente in tre dimensioni, si può scrivere il flusso come j = −D∇ρ con il segno negativo perché il flusso va verso la zona con minore concentrazione. La costante D è detta constante di diffusione. Questa è la prima legge di Fick, che insieme all’equazione di continuità (equazione 3.5) con il termine non omogeneo diventa la seconda legge di Fick: ∂ρ − D∇2 ρ = f (ρ, x, t) ∂t (3.6) nota comunemente come equazione di reazione-diffusione. Il termine non omogeneo dà la velocità di reazione. 2 Ma sarebbe desiderabile che sia una funzione liscia o meglio ancora, una distribuzione. 36 Questa equazione è molto generale per descrivere processi come le reazioni chimiche o il trasporto ionico. Prendiamo come esempio quello del decadimento radioattivo. Essendo che non viene specificato che il materiale si diffonde omettiamo questo termine, rimanendo ∂A = f (A, x, t) ∂t Come la reazione non dipende esplicitamente ne dello spazio ne del tempo, il termine che descrive la velocità di reazione dipende solamente della variabile A. Assumiamo una proporzionalità lineare tra la velocità di reazione e la concentrazione e si ottiene Ȧ = kA dove scegliendo la costante k in modo opportuno si ottiene il modello di prima per il decadimento radioattivo. Invece, nella la diffusione di un soluto in un solvente, senza reazione tra i due, si può eliminare il termine di reazione e finire con una pura equazione di diffusione: ∂ρ = D∇2 ρ ∂t 3.3 Schema cinetico di una reazione Altro tipo di modello matematico ha a che fare con processi stocastici, cioè processi non deterministici e che devono essere studiati usando metodi statistici. Il decadimento radioattivo ne è un esempio. Non si può sapere con certezza quando un atomo subirà una disintegrazione, ma studiando il sistema per un lungo periodo in una situazione sufficientemente stabile si possono ottenere informazioni statistiche come il tempo di vita medio del campione. Prendiamo quindi come base un processo che trasforma uno stato A nello stato B, dove lo stato A è composto di una popolazione iniziale NA , mentre lo stato B ha una popolazione NB molto grande (diciamo pure dell’ordine del numero di Avogadro). Fissiamo una probabilità che un elemento di A si trasformi in un elemento di B con una probabilità molto piccola p, fissato n’intervallo di tempo ∆t. In questo intervallo di tempo una parte pA si è trasformata in B e quindi si ha che A(t + ∆t) = A(t) − pA(t) B(t + ∆t) = B(t) + pB(t) (3.7) La probabilità di transizione p, essendo una probabilità, è forzata a essere in [0,1]. Ovviamente p è anche una funzione del tempo trascorso, perché ci aspettiamo che per intervalli di tempo grandi (tendenti all’infinito) ci sia la certezza di una transizione, quindi lim p(∆t) = 1 ∆t→∞ 37 k A B Figura 3.1: Schema cinetico per la reazione A → B. considerando le equazioni 3.9, dividendo per ∆t e facendo il limite di ∆t che tende a zero si ha A(t + ∆t) − A(t) p(∆t)A(t) = − lim ∆t→∞ ∆t→∞ ∆t ∆t dA dp = − (0)A dt dt lim (3.8) Procedendo nella stesa forma per l’altra equazione si ha dB dp = (0)A dt dt Questo tipo di equazioni vengono chiamate equazioni maestre e descrivono il l’evoluzione temporale dovuta ad un processo stocastico. Ci siamo ricondotti nuovamente al modello di decadimento esponenziale portando il sistema al continuo. Definiamo dp (0) = k dt (3.9) si ha che è una costante nel tempo (potrebbe dipendere da altri fattori, come lo spazio o come si vedrà nel prossimo capitolo, dal potenziale della membrana cellulare). Se si rappresenta questo processo mediante un grafo orientato, dove i vertici sono gli stati del sistema e i lati del grafo sono la direzione in cui avviene la trasformazione con k la costante di trasformazione, le reazioni di questo tipo possono essere rappresentate mediante una catena di Markov. Questo processo markoviano viene chiamato schema cinetico. Queste sono adatte per la rappresentazione di processi dove sono coinvolte molte particelle, il che impedirebbe di studiare in modo deterministico il sistema. Esempi di questi processi sono le reazioni chimiche. Come mostrato nella prima parte di questo capitolo, si possono connettere diversi stati con diverse costanti generando un grafo anche molto complicato. In più, il grafo non deve necessariamente essere aciclico, cioè, si può essere nella situazione dove lo stato A si trasforma nello stato B e viceversa. 3.4 Discretizzazione di una equazione differenziale Come detto prima, il computer non può gestire dati continui, cosi bisogna rendere le equazioni discrete nello spazio e nel tempo. 38 Figura 3.2: A sinistra: funzione ex/2 + 2cos(x) e le sue derivate analitica, numerica con errore O(∆x) e con errore O(∆x2 ). Le linee delle derivate sono praticamente sovrapposte. A destra: differenza tra i due metodi. Il motivo per cui è preferibile che le funzioni siano lisce sta nella possibilità di scrivere queste come uno sviluppo di Taylor attorno ad un punto x 2 00 f (x) + ... 2 questo permette di avere il valore di una funzione in un punto x+. Fissando = ∆x ed eliminando i termini dopo un certo ordine si ottiene un’espressione che ha un numero finiti di elementi, ma si aggiunge anche un errore, ad esempio f (x + ) = f (x) + f 0 (x) + f (x + ∆x) = f (x) + ∆xf 0 (x) + ∆x2 00 f (x) + O(∆x3 ) 2 e questo permette di scrivere le derivate di un certo ordine in una griglia di passo ∆x avendo i valori della funzione nei punti n∆x che stano nel punto n-esimo della griglia, ad esempio per i primi due ordini: f (x + ∆x) − f (x) + O(∆x) ∆x f (x + ∆x/2) − f (x − ∆x/2) f 0 (x) = + O(∆x2 ) ∆x f (x + ∆x) + f (x − ∆x) − 2f (x) + O(∆x2 ) f 00 (x) = ∆x2 f 0 (x) = (3.10) Notare che la seconda espressione della derivata prima ha un errore minore, a patto che si conosca il valore della funzione nei punti ±∆x/2 del punto dove 39 si calcola questa. Questa proprietà diventerà molto utile dopo3 . Quindi, accettando di introdurre un errore nei calcoli, si possono calcolare le derivate di una funzione in punti discreti. Questo permette l’implementazione al computer di questo tipo di espressioni, ma ci sono ancora alcune problematiche. Per primo, si potrebbe pensare che, fissato un intervallo (x0 , xf ), riducendo ∆x e di conseguenza aumentando n = (xf − x0 )/∆x sia conveniente. Questo è vero fino un certo punto. Come si vedrà dopo, per integrare un’equazione differenziale con metodi numerici bisogna eseguire un numero di operazioni a grosso modo dell’ordine di n. E quindi la complessità computazionale aumenta direttamente con n. Data la velocità dei processori moderni questo potrebbe non essere un problema per modelli relativamente semplici, ma per grandi simulazioni bisogna tenere in conto quanto si guadagna in termini di precisione dei calcoli rispetto al tempo di simulazione. In effetti, è molto comune, in simulazioni di proteine con metodi di dinamica molecolare, che qualche microsecondo di simulazione impieghi molte settimane[8]. Altro problema che sorge al scegliere un ∆x molto piccolo ha a che fare con la precisione del computer. I numeri decimali a singola precisione4 sono rappresentati da 32 bit, di cui la mantissa ha 23 bit, mentre l’esponente ha 8, con il restante bit per il segno. Di nuovo, il fatto che di deva rappresentare i numeri mediante una base numerica finita fa si che non si abbia un rango continuo di numeri e questo introduce un’ulteriore errore5 . Avendo allora trovato un’espressione per la derivata che sia leggibile dal computer, diventa possibile anche la scrittura di equazioni differenziali. Prendiamo ad esempio l’equazione df = g(t) dt Siccome questa uguaglianza deve valere per ogni x e ogni t si può discretizzare l’equazione come f (t + ∆t/2) − f (t − ∆t/2) = g(t) ∆t e usando una griglia tn = n∆t si può scrivere per ogni punto della griglia f (n∆t + ∆t/2) − f (n∆t − ∆t/2) = g(n∆t) ∆t Quindi può anche essere trattata come un sistema di n equazioni con n incognite, dove le incognite sono i valori della funzione f (t) nel n-esimo punto. 3 Se si ha l’espressione analitica si può sapere il valore della funzione in un qualsiasi punto. Questo potrebbe non essere vero se si ha solo un array di valori della funzione. 4 Standard IEEE 754 5 A volte anche fatale: http://ta.twi.tudelft.nl/users/vuik/wi211/disasters.html 40 3.5 Integrazione numerica Risolvere il un sistema di equazioni differenziali con il metodo algebrico brevemente illustrato nella sezione precedente non è molto conveniente, in quanto la complessità computazionale è maggiore rispetto a metodi iterativi. Questi metodi si basano sul fatto che le derivate in un punto possono essere scritte usando i valori della funzione e delle derivate in altri punti vicini. Molti tipi di algoritmi sono stati sviluppati per risolvere equazioni differenziali, per cui illustreremo questo concetto con il più semplice algoritmo d’integrazione: l’algoritmo di Euler. Come visto nella sezione precedente, il primo metodo per trovare la derivata di una funzione si può scrivere come f 0 (n∆x) = f ((n + 1)∆x) − f (n∆x) + O(∆x) n∆x Per cui supponiamo di avere l’espressione della derivata come f 0 = g(t) per tutte le t e una condizione iniziale f (t0 ). Si può scrivere il valore della funzione al punto t1 = t0 + ∆t come f (t1 ) = f (t0 ) + ∆tf 0 (t0 ) e anche i punti successivi tn = t0 + n∆t f (t2 ) = f (t1 ) + ∆tf 0 (t1 ) f (t3 ) = f (t2 ) + ∆tf 0 (t2 ) ... f (tn ) = f (tn−1 ) + ∆tf 0 (tn−1 ) notando che per ogni successivo n, uso il valore della funzione al punto n−1. Integrare in questo modo è efficiente, ma comporta il problema dell’accumulo degli errori. Per le derivate l’errore dipende solamente del punto dove si valuta questo, ma per l’integrazione numerica, essendo che il valore in un punto dipende del valore di tutti i valori precedenti, si ha un errore proporzionale a n. Nel metodo di Euler per l’integrazione, la derivata ha un errore O(∆t), quindi l’errore totale è dell’ordine di nO(∆t). Sotto certe condizioni, può accadere che gli errori si cancellino, come succede nel caso di sistemi armonici, dove gli errori si annullano per ogni ciclo. Ma non si dovrebbe usare mai questo algoritmo in situazioni reali, dove non si può sempre contare con il buon comportamento degli errori. Esistono in effetti migliori algoritmi, con minore errore e migliori proprietà di stabilità e vengono implementate in librerie da usare nelle simulazioni in molti linguaggi di programmazione, per cui non è necessario conoscere al dettaglio il funzionamento dell’algoritmo. Molto notti tra questi algoritmi sono i metodi di Runge-Kutta. 41 Figura 3.3: A sinistra: funzione ex/2 +2cos(x) e l’integrale della sua derivata analitica. Le due curve sono praticamente sovrapposte. A destra: la loro differenza. Notare che ad un certo punto l’errore diventa nullo, per poi aumentare ancora. 3.6 Ottimizzazione L’ottimizzazione è il processo in cui si scelgono i parametri di un modello che diano la risposta desiderata, o comunque ci si avvicini di più a questa. Normalmente, il processo d’ottimizzazione consiste nella minimizzazione di una funzione oggettivo, che potrebbe essere ad esempio l’errore rispetto a la risposta desiderata e quindi l’ottimizzazione sarebbe scegliere i parametri che riducono l’errore rispetto la risposta desiderata. Ci sono diverse tecniche di ottimizzazione, la più semplice probabilmente è la discesa del gradiente (gradient descent o GD). Questa procedura consiste nel trovare prima una funzione di errore in funzione ai parametri del modello, che solitamente è l’errore quadratico medio, per poi trovare i gradienti rispetto a questi parametri. Questo permette di spostarsi iterativamente nell’iperpiano formato dalla funzione di errore andando nella direzione contraria al gradiente (che sarebbe la direzione dove cresce la funzione) mediante la ricetta x̂n+1 = x̂n − ∇E(x̂n ) cosi da ridurre la funzione errore e arrivare possibilmente ad un minimo globale. Nella formula precedente x̂ è il vettore dei parametri del modello, è il passo della discesa e viene chiamata “learning rate”, mentre E(x̂n ) è l’errore in funzione dei parametri. Non è sempre possibile arrivare a un minimo globale dell’errore comunque. In effetti, a priori, non si conosce la topologia della funzione di errore, 42 e ci si potrebbe trovare nella situazione in cui il processo di ottimizzazione rimane intrappolato in un minimo locale, che potrebbe non essere quello globale. Altri algoritmi di ottimizzazione esistono che migliorano le proprietà del GD. Una semplice modifica sarebbe l’algoritmo di discesa del gradiente stocastica (SGD), che esplora diversi punti nell’iperpiano dell’errore in modo casuale, con la speranza di evitare minimi locali. Altra tecnica è quella dell’aggiunta di un momento x̂n+1 = x̂n − ∇E(x̂n ) + λ (x̂n − x̂n−1 ) che aiuta a non rimanere intrappolati in un minimo globale. 43 44 Capitolo 4 Modello di Hodgkin-Huxley e teoria di Rall 4.1 Modello di Hodgkin-Huxley Nel 1952, Hodgkin e Huxley eseguirono una serie di esperimenti, vincitore di un premio Nobel per la medicina nel 1963, con ”l’assone gigante” di un calamaro[17]. Usando una tecnica che permetteva di stimolare e misurare il potenziale di membrana dell’assone con degli elettrodi inseriti dentro di questo, egli trovarono tre tipi di correnti ioniche: sodio, potassio e una corrente di dispersione. Canali ionici specifici controllano il flusso di ioni da un lato all’altro della membrana, mentre la corrente di dispersione avviene per processi metabolici che forzano diverse concentrazioni di ioni tra l’interno e nell’esterno della membrana. Questa differenza di cariche dai due lati della parete cellulare genera il potenziale della membrana. 4.1.1 Il modello Si può pensare alla membrana cellulare come il dielettrico di un condensatore sferico che tiene separate le cariche tra l’interno e l’esterno. Questo è ragionevole perché la membrana di per se non permette il passaggio di ioni, in quanto è composta da lipidi. Il passaggio di ioni attraverso la membrana viene permesso dai canali ionici, che possono essere pensati come molte piccole resistenze in parallelo e quindi con il risultato equivalente di una sola resistenza che ha come valore la somma di tutte. Essendo questi canali specifici per ogni tipo di canale ionico, si ha che il modello dovrebbe prevedere una resistenza per il sodio e una per il potassio e per i canali di dispersione. La differenza di concentrazione genera una differenza di potenziale, che dipende dalle diverse concentrazioni tra i due lati della membrana secondo l’equazione di Nerst RT [Q]out E= ln zF [Q]in 45 outside gK gN a gl EK EN a El Cm inside Figura 4.1: Circuito equivalente per il modello di Hodgkin-Huxley. Quando i canali ionici si aprono, gli ioni si diffondono verso la zona di minore concentrazione, che è equivalente al trasporto di cariche generato da una differenza di potenziale in una resistenza. Dentro della membrana si può trovare una maggiore concentrazione di K+ e quindi a questo ione viene assegnata una batteria con il polo positivo diretto all’interno. Il Na+ invece è il contrario. L’apertura dei canali ionici porterebbe ad un equilibrio a lungo termine, e quindi a che la cellula non sia più capace di scambiare ioni. Per questo è necessario un meccanismo che ristabilisca il disequilibrio. Per cui viene associata una batteria di dispersione a questo meccanismo, che porta gli ioni al loro stato iniziale. Si ha quindi un circuito equivalente come nella figura 4.1, dove bisogna considerare che l’apertura dei canali ionici dipende dal potenziale della membrana e quindi la conduttanza totale è variabile. Anche le batterie dovrebbero essere variabili, ma il trasporto di ioni durante l’apertura dei canali non cambia significativamente le concentrazioni dentro e fuori, per cui si possono considerare come costanti. Usando le leggi di Kirchhoff, si possono studiare le correnti e i potenziali nella membrana − Cm ∂V = Il + IN a + IK ∂t (4.1) cioè, la somma delle correnti che attraversano un nodo è nulla. Le correnti possono essere calcolate, tenendo in conto che il circuito è parallelo e che la 46 somma della tensione in ogni maglia è nulla1 Vm = IK Il IN a + EN a = + EK + El = gl gN a gK (4.2) quindi Il = gl (Vm − El ) IN a = gN a (Vm − EN a ) (4.3) IK = gK (Vm − EK ) Dagli esperimenti è stato osservato che il comportamento dell’assone è complicato. Stimolando con una corrente bassa il potenziale sale di poco e una volta spenta questa corrente questo ritorna al valore di riposo. Invece con un forte stimolo il potenziale della membrana cresce fino ad una soglia, dove molto rapidamente la membrana di depolarizza e poi si iperpolarizza, cioè il AP. Se non si spegne la corrente questo fenomeno continua ad accadere con una certa frequenza come se fosse un oscillatore. Altra caratteristica di queste raffiche di segnali è che non è possibile generare altri AP durante un certo periodo di tempo dopo un AP precedente. Questo periodo di tempo si denomina periodo refrattario. Per spiegare questo fenomeno Hodgkin e Huxley studiarono in dettaglio le correnti ioniche separandole. In questo modo si ottennero dei modelli per le conduttanze dei canali ionici. Si osservò che la conduttanza dei canali di potassio aumentava come (1 − exp(−t))4 quando si depolarizza la membrana, mentre decade con legge exp(−4t) quando non è più depolarizzata[17]. Quindi si ipotizza che i canali di potassio siano composte di quattro porte, che si aprono in maniera casuale con maggiore probabilità quando la membrana è depolarizzata. Se si assume che nella membrana ci sia una quantità enorme di canali, cosi da poter lavorare con le medie, si può descrivere la popolazione di canali aperti con una variabile n che va da 0 a 1. Cosi si può costruire un modello come dn = αn (1 − n) − βn n dt gK = g¯K n4 dove g¯K è la conduttanza massima della membrana, quando tutti i canali sono aperti. La prima equazione descrive qualcosa che somiglia ad una reazione. In effetti la variabile n passa dallo stato accesso allo stato spento in modo casuale, per cui si può descrivere come un processo markoviano. Allo stesso modo, il canale del sodio isolato può essere descritto mediante due stati dm = αm (1 − m) − βm m dt 1 D’ora in poi sarà usata la conduttanza al posto della resistenza. g = 1/R. 47 K -85 36 E (mV) ḡ (mS/cm2 ) Na 45 120 l -60 0.3 Tabella 4.1: Parametri del modello Figura 4.2: Valori all’equilibrio degli stati n, m e h in funzione del potenziale di membrana. dh = αh (1 − h) − βh h dt gN a = gN ¯ a m3 h dove in questo caso lo stato m apre il canale ionico, mentre lo stato h lo chiude. Le funzioni α e β dei rispettivi stati sono stati dedotti dai dati esperimentali ottenuti fissando il potenziale della membrana e misurando gli stati quando raggiungono l’equilibrio, cioè n∞ = αn αn + βn αm αm + βm αh = αh + β h m∞ = h∞ ottenendo le funzioni α e β per ogni stato: αn = −0.01(60 + Vm ) e −60−Vm 10 48 −1 αm = −0.1(45 + Vm ) e −45−Vm 10 αh = 0.07e −70−Vm 18 βn = 0.125e βm = 4e βh = −70−Vm 80 −70−Vm 18 1 1+e −40−Vm 10 Includendo la capacità della membrana, per cui si fissa un valore di 1 µF/cm2 , si hanno tutti i parametri del modello necessari per il suo studio. 4.1.2 Simulazione In questo modello si devono risolvere quattro equazioni differenziali: una per il potenziale della membrana e tre per gli stati n, m e h. Quindi la dinamica del sistema può essere descritta mediante una linea su di uno spazio delle fasi di quattro dimensioni con il tempo come parametro della curva. Per la soluzione esplicita è anche richiesto lo stato iniziale del sistema (condizione al contorno di Dirichlet), cioè un punto nello spazio delle fasi. Si scelgono gli stati all’equilibrio, cioè quando le derivate degli stati si annullano. Questo vuol dire, nel caso del potenziale, che non ci sono correnti ioniche totali, per l’equazione 4.1. Ma questo non vuol dire che non ci sono correnti per ogni specie, ma che la loro somma si annulla. Usando le equazioni 4.4 si ha gl (Vm − El ) + gN a (Vm − EN a ) + gK (Vm − EK ) = 0 Le conduttanze invece sono dipendenti dagli stati n, m e h, le cui derivate devono a loro volta annullarsi quando il sistema è in equilibrio. Si potrebbe procedere a minimizzare le derivate con qualche algoritmo di ottimizzazione. Invece in questo caso si procede alla simulazione diretta, assumendo che il sistema quando non è eccitato tende all’equilibrio, cioè lo stato a riposo è un attrattore nello spazio delle fasi. Scegliendo un valore ragionevole per il potenziale di −70mV , determinato sperimentalmente, e per gli stati i loro valori corrispondenti al limite per questo potenziale come in figura 4.2, si ha lo stato iniziale per il sistema Vm = −70mV n = 0.3 m = 0.05 h = 0.65 49 (4.4) Figura 4.3: Andamento nel tempo del potenziale di membrana e gli stati dei canali ionici quando la cellula non è eccitata. Le diverse simulazioni usano l’algoritmo d’integrazione LSODE2 Una prima simulazione per il sistema non eccitato con una corrente esterna risulta in un andamento nel tempo come in figura 4.3 Si può osservare un piccolo transiente per il fatto che il sistema non è precisamente in equilibrio. Il potenziale di membrana viene attratto verso −71mV e rimane in questo stato per il resto della simulazione. Si può studiare il sistema iniettando una corrente, il che porterebbe l’equazione 4.1 a ∂V − Cm = Il + IN a + IK − Iin (4.5) ∂t Questa aggiunta di corrente fa diventare la derivata del potenziale rispetto al tempo positiva, incrementando il potenziale della membrana. Se questo potenziale supera un certo limite (tensione di soglia), la combinazione delle diverse correnti ioniche e le loro particolari dinamiche causano che la cellula generi un AP. In particolare, questo aumento del potenziale causa un incremento della conduttanza del sodio, che viene controllata dalla variabile m. Questo flusso di corrente di ioni depolarizza la membrana ancora di più. Questo feedback positivo causa un aumento molto veloce del potenziale della membrana, il che causa un l’attivazione delle variabili n e la l’inattivazione di h (vedere figura 4.2). Lo stato h blocca i canali del sodio, mentre la apertura lenta dei canali del potassio causa la repolarizzazione della membrana per un flusso di ioni di potassio verso l’esterno. Questa corrente di potassio continua fino la chiusura completa dei rispettivi canali, causando l’iperpolarizzazione della membrana e quello che viene denominato periodo refrattario, cioè il periodo di tempo in cui la cellula non può generare altri AP. 2 Livermore Solver for Ordinary Differential Equations[16]. 50 Figura 4.4: A sinistra: conduttanza dei canali ionici durante un AP. Al centro e destra: Andamento nel tempo del sistema quando viene eccitato da una corrente di 5µA/cm2 a 40 ms. Figura 4.5: A sinistra: Andamento nel tempo del sistema quando viene eccitato da una corrente di 10µA/cm2 a 40 ms. A destra: Somma temporale degli EPSC generato da pulsi di 40Hz con ciclo di lavoro di 10% e corrente di pico di 55µA/cm2 . Incrementando la corrente introdotta nella cellula si può osservare un fenomeno oscillatorio, cioè la continua generazione di AP. Nella situazione anteriore il AP veniva generato una sola volta e anche se la corrente continuava ad entrare non si sono prodotti altri AP. Con sufficiente corrente si possono generare successioni di AP. Quando il sistema viene eccitato non da una corrente costante, ma da una corrente pulsante con basso ciclo di lavoro e con una certa frequenza (in generale non costante) si può osservare il fenomeno di somma temporale. Quando la corrente non è abbastanza da generare un AP, comunque può depolarizzare la membrana. La tensione della membrana ritornerà al suo valore d’equilibrio dopo un certo tempo, quindi se altro pulso di corrente arriva al sistema, il potenziale generato si va a sommare al potenziale rimanente3 . L’accumulo di questi piccoli potenziali può arrivare fino la tensione 3 Non è una somma nel senso matematico, è per indicare che si va ad aggiungere al 51 inside RL RT RL RL RL C outside Figura 4.6: Circuito equivalente di un segmento di cavo dendritico. di soglia, generando un AP. 4.2 Modello di Rall Il modello di Hodgkin-Huxley è un buon modello che spiega molti fenomeni nel neurone. Ma è un modello che non tiene conto della struttura della cellula. Come ben noto, il neurone è un tipo di cellula particolare che esibisce un albero dendritico, a volte anche molto ramificato e che può estendersi molti micrometri. Gli impulsi sinaptici di neuroni presinaptici arrivano principalmente ai dendriti, che genererà un potenziale postsinaptico (eccitatorio o inibitorio) e questo impulso dovrà propagarsi fino il soma per produrre possibilmente un AP nel cono di emergenza. Finora il modello di HodgkinHuxley tratta di movimenti ionici trasversali, che attraversano la membrana. Ma se in un punto dell’albero dendritico viene generato un potenziale, questo potenziale non può propagarsi con velocità infinita verso il soma, per cui la differente distribuzione del potenziale nella membrana cellulare causa anche un moto longitudinale di ioni nei dendriti. Quindi serve un modello per studiare come si propaga questo segnale nella membrana cellulare. 4.2.1 Equazione del cavo Consideriamo un segmento di dendrite, con le stesse caratteristiche dell’assone nel modello di Hodgkin-Huxley. Quindi si ha un condensatore cilindrico con delle conduttanze distribuite lungo la parete cellulare. Ma a differenza di prima, dove tutte le resistenze in parallelo si sommano, ora si divide il condensatore cilindrico in tanti piccoli condensatori cilindrici e si studia il modello risultante di fronte ad un cambiamento localizzato del potenziale di uno di questi cilindri. Quindi il circuito equivalente è come nella figura 4.6 In questo circuito la resistenza RL è la resistenza tra due punti distanti ∆x, quindi dipende anche della distanza tra questi punti e la sezione per la legge di Ohm ρL ∆x RL = (4.6) A potenziale residuo, alzandone il livello. 52 dove ρL ha come unità [Ωcm]. La resistenza R invece è una normale resistenza, che è l’inverso delle conduttanze dei canali ionici, mentre C la capacità della membrana. Pendiamo in considerazione un particolare cilindretto e supponiamo che in questo punto si inietta una corrente I. In questo vertice dovendo comunque essere rispettate le leggi di Kirchhoff, si ha che la somma delle correnti è nulla: ∂Vm Vm I + Iin − Iout − C − =0 (4.7) ∂t R dove viene indicato con Iin e Iout la corrente entrante e uscente nel punto dentro del cavo. La corrente entrante al nodo dipende dalla differenza di potenziale tra il nodo precedente e il nodo in esame secondo la legge di Ohm e lo stesso vale per la corrente uscente: Iin = πD2 V−1 − Vm 4ρL ∆x Iout = πD2 Vm − V+1 4ρL ∆x dove è stata usata l’equazione 4.6, con D il diametro del cilindro. Quindi si può riscrivere la somma delle correnti entrati e uscenti dentro del cavo come Iin − Iout = πD2 V−1 − 2Vm + V+1 4ρL ∆x (4.8) La somma delle correnti in un particolare cilindro finora non dipende della geometria, cioè della lunghezza e diametro del cilindro, che poi si vorrà far diventare di lunghezza infinitesima. Quindi riscriviamo i diversi parametri come C = πDc∆x (4.9) 1 R= πDgm ∆x dove gm è la conduttanza della membrana in [S/cm2 ], tenendo conto di tutti i tipi di canali ionici. Usando anche l’equazione 4.8 e 4.6 si può riscrivere l’equazione 4.9 come V−1 − 2Vm + V+1 ∂Vm − πDc∆x − πDVm gm ∆x = 0 4ρL ∆x ∂t I V−1 − 2Vm + V+1 ∂Vm +D −c − Vm gm = 0 2 πD∆x 4ρL ∆x ∂t I + πD2 (4.10) Nel secondo termine di quest’ultima equazione si può riconoscere la derivata seconda di una funzione rispetto a la variabile x quando ∆x tende a zero nel punto centrale (equazione 3.10), cioè dove viene valutata Vm e consideriamo 53 la corrente I come funzione della posizione 4 . Quindi riscriviamo l’equazione 4.10 come D ∂ 2 Vm ∂Vm i+ −c − V m gm = 0 (4.11) 2 4ρL ∂x ∂t dove i= 1 ∂I 2πR ∂x è la densità di corrente entrante nella membrana dall’esterno, in [A/cm2 ]. L’equazione 4.11 è un’equazione di reazione diffusione completa, anche se l’interpretazione come tale non sia molto intuitiva. Il risultato è che cambiamenti locali del potenziale della membrana, ad esempio un EPSP, si diffondono lungo il cavo al passare del tempo. Quindi le soluzioni di questa equazione danno la distribuzione del potenziale lungo il cavo in funzione del tempo e delle correnti entranti nel cavo. Le correnti ioniche in principio possono essere composte di diverse correnti ioniche corrispondenti a diversi canali ionici. Ma per i dendriti si assume che sono dei componenti passivi, quindi l’unica conduttanza è quella di dispersione gl . Quindi la corrente ionica vale iion = gl (Vm − El ) con El il potenziale di Nerst dei canali passivi. Sostituendo quest’espressione e dividendo tutto per gl e rinominando D/4gl ρL = λ2 e c/gl = τ si ha λ2 ∂ 2 Vm ∂Vm −τ = gl (Vm − E0 ) − i ∂x2 ∂t (4.12) La costante λ viene chiamata costante di spazio, mentre τ è la costante di tempo della membrana. La costante elettrotonica rappresenta la lunghezza in unità di λ. L’equazione 4.12 può essere riscritta come ∂ 2 V̂ ∂ Vˆm − = gl V̂ − i ∂ x̂2 ∂ t̂ (4.13) con i cambiamenti di variabile x → x̂ = x/λ t → t̂ = t/τ Vm → V̂ = Vm − El 4 Di nuovo, la possibilità di considerare questa corrente come distribuzione di Schwartz, invece di semplice funzione permetterebbe di studiare correnti applicate al punto come una delta di Dirac. 54 Figura 4.7: Soluzioni dell’equazione del cavo finito con un impulso al punto x=1. A sinistra il potenziale in funzione dello spazio. A destra, il potenziale in funzione del tempo per qualche punto nel cavo Quest’equazione ha soluzione usando il metodo delle funzioni di Green per un impulso i = δ(x̂, t̂) come θ(t̂) x̂2 V̂ (x̂, t̂) = √ exp −t̂ − = G(t̂, x̂) 4t̂ 4π t̂ per il cavo di lunghezza infinita, con θ(t̂) la distribuzione gradino di Heaviside. Per un cavo di lunghezza finita bisogna imporre delle condizioni al contorno. Se gli estremi del cavo sono sigillati, la corrente in questi punti è nulla e quindi anche la derivata del potenziale rispetto a x. Grazie alla natura lineare delle soluzioni, le condizioni al contorno possono essere soddisfate aggiungendo delle correnti virtuali fuori l’intervallo dove è definita la soluzione, in modo che annulli la derivata in questo punto, annullando il valore del potenziale. Questa procedura prosegue ricorsivamente per compensare l’alterazione che l’aggiunta di correnti virtuali da un lato dell’intervallo causa nelle condizioni al contorno dall’altro lato. Quindi una soluzione generale 55 1 2 RL RT 1 2 RL RT 1 2 RL C 1 2 RL C 1 2 RL RT 1 2 RL C Figura 4.8: Modello compartimentale di un albero dendritico. rettangolo rappresenta un compartimento. Ogni al problema è Z t̂ V̂ (x̂, t̂) = Z dt ∞ 0 0 0 L dx0 G[0,L] (t0 , x0 ; t̂, x̂)i(t0 , x0 ) 0 G[0,L] (t , x ; t̂, x̂) = ∞ X G(t̂ − t0 , x̂ − 2nL − x0 ) + G(t̂ − t0 , x̂ − 2nL + x0 ) n=−∞ (4.14) 4.2.2 Modelli compartimentali L’equazione del cavo da la soluzione per la distribuzione del potenziale in un cavo cilindrico uniforme rispetto al tempo e lo spazio. Ora il problema è lo studio del potenziale rispetto a diversi punti di un albero dendritico. Localmente l’albero dendritico assomiglia a un cavo, ma nei punti di biforcazione diventa difficile trovare una soluzione analitica. Quindi si ricorre alla soluzione numerica, che richiede la discretizzazione dell’albero nello spazio. Quindi l’albero viene suddiviso in piccoli cilindretti tali che abbiano, al meno in modo approssimato, lo stesso potenziale. Questa semplificazione permette di studiare ogni cilindro come in sistema simile a quello di figura 4.6, con solo un condensatore e una resistenza in parallelo, e due resistenze assiali di valore RL /2 che vanno a comunicare con altri compartimenti. Cosi facendo, si ha un sistema di equazioni differenziali che si possono risolvere rispettando le condizioni al contorno. Il risultato non è più una distribuzione continua del potenziale nell’albero dendritico, ma il valore del potenziale associato ad un numero finito di compartimenti. A questo punto, ogni compartimento può anche essere dotato di canali ionici diversi e anche non lineari e il sistema può essere risolto numericamente. 56 Capitolo 5 NEURON e Python 5.1 NEURON NEURON1 [4] è un ambiente di simulazione per modellare singoli neuroni e retti di neuroni. Questo framework è dotato di diversi strumenti, necessari per il flusso di un lavoro di simulazione. La parte principale di NEURON è un software che implementa i modelli di Hodgkin-Huxley e i modelli compartimentali per il disegno accurato di neuroni realistici. Il modo in cui i neuroni devono essere specificati per la simulazione in NEURON consiste nei seguenti punti: • Definizione di ogni compartimento • La definizione della topologia del neurone (come sono connessi i compartimenti) • La definizione della geometria (dimensioni e posizione nello spazio) • Definire il comportamento di ogni compartimento (la biofisica) • Se necessario, aggiungere la connettività tra neuroni mediante sinapsi Per la definizione dei compartimenti, la topologia e il controllo della simulazione si ricorre al linguaggio HOC2 che viene implementato dentro del framework. Invece per la definizione dei singoli meccanismi, siano questi canali ionici, recettori o il semplice calcolo delle dinamiche degli ioni all’interno e l’esterno della cellula, da incorporare in ogni sezione si ricorre al linguaggio di scripting NMODL3 . Questo linguaggio permette la definizione di meccanismi cellulari mediante l’uso di equazioni differenziali o la scrittura delle reazioni che avvengono e le costanti per le reazioni. 1 https://www.neuron.yale.edu/ High Order Calculator 3 https://www.neuron.yale.edu/neuron/static/docs/help/neuron/nmodl/nmodl.html 2 57 NEURON gestisce automaticamente la discretizzazione spazio-temporale delle equazioni differenziali, In più implementa diversi algoritmi per l’integrazione numerica che quindi non bisogna scrivere da zero. 5.2 Python Python 4 è un linguaggio di programmazione generale, che supporta diversi paradigmi di programmazione (procedurale, orientato a oggetti, funzionale, etc.). Python è un linguaggio facile da imparare e grazie a le librerie scientifiche (come numpy e scipy) è anche diventato uno standard nella comunità scientifica. Il fatto che sia a proposito generale lo rende utile in situazioni in cui bisogna fare programmi complessi che legano il processo di e la manipolazione di dati, il controllo automatico delle operazioni e la comunicazione con il sistema operativo. In questo lavoro, tutte le simulazioni ad eccezione di quelle del capitolo 8, sono state fatte in puro Python usando numpy per il calcolo numerico e Seaborn, un wrapper di matplotlib per la generazione dei grafici lungo questa tesi. 5.2.1 NEURON in Python In generale, per costruire i neuroni da simulare si può ricorrere all’uso del linguaggio di programmazione HOC, che è il principale linguaggio di scripting di NEURON. Alternativamente si può usare il linguaggio di programmazione Python, con le librerie compilate nel codice sorgente di NEURON. Questo permette di usare il nucleo di NEURON solo per la definizione dei meccanismi e svolgere la simulazione, mentre in Python si può definire completamente le caratteristiche della cellula, controllare il flusso della simulazione, raccogliere i dati, processarli, visualizzarli o salvarli per un uso posteriore. 4 https://www.python.org/ 58 Parte II Plasticità sinaptica nella cellula dei granuli e la fibra muscoide 59 Capitolo 6 Modello del granulo 6.1 Cellula dei granuli Il neurone simulato in questo lavoro è il granulo di un roditore. Diversi lavori sono stati fatti per ricostruire la struttura di questa cellula e la distribuzione e caratteristiche dei diversi meccanismi cellulari. La struttura deriva da ricostruzione al microscopio e il metodo di Golgi per la impregnazione cromoargentica[18, 28]. Questi sono neuroni molto piccoli (il soma tipicamente è di 5-6µm) e normalmente hanno tra tre e cinque dendriti. L’assone non è coperto da una guaina mielinica e questo si dirige verso lo strato molecolare, per poi dividersi a forma di T per formare le fibre parallele che vanno ad incontrare i dendriti delle cellule di Purkinje per formare sinapsi. Rilascia glutammato come neurotrasmettitore il che la rende una cellula eccitatoria, in effetti è l’unica cellula eccitatoria nel cervelletto. Riceve il segnale eccitatorio dalle fibre muscoidi afferenti e inibitorio dalle cellule di Golgi. Sono i neuroni più numerosi nel cervello. I corpi cellulari formano uno strato denso chiamato strato granulare, nella corteccia cerebellare. I dendriti hanno una lunghezza media di 15µm con un diametro di 0.75µm. L’assone invece ha una lunghezza variabile di qualche decina di µm a qualche centinaio. Dopo la separazione a T, i rami possono percorrere una distanza media di 3mm in ogni direzione. I dendriti dei granuli formano un complesso, insieme a le fibre afferenti e gli assoni delle cellule di Golgi, chiamato glomerulo cerebellare. Questo si trova nello strato granulare. Ha un diametro di 2.5µm e sono ricoperti dalla uno strato gliale. Per lo studio del funzionamento di questa cellula, un modello multicompartimentale è necessario, in quanto le proprietà del segnale generato nell’attivazione della cellula dipendono della distribuzione dei diversi tipi di canali ionici. I tipi di ioni in questa cellula sono il sodio, potassio e calcio e possono esserci diversi tipi di canale per ogni tipo di ione. La distribuzione 61 Figura 6.1: Fibre parallele. Si possono vedere i piccoli granuli nella parte inferiore e i loro assoni che ascendono per poi dividersi e formare sinapsi con le cellule di Purkinje (viste trasversalmente). Fonte: Cunningham’s Textbook of anatomy; Daniel John Cunningham - 1913. dei canali è stata replicata usando come modello le misurazioni su cervelletti di rodenti. Nei dendriti vengono implementati i recettori sinaptici di tipo AMPA, NMDA e GABA, che generato il segnale eccitatorio, nel caso dei due primi, e inibitorio per l’ultimo. 6.2 Modelli matematici per i diversi meccanismi Per realizzare una simulazione sono necessarie le equazioni che descrivono le dinamiche del sistema, che poi dovranno essere discretizzate per poter essere riconosciute dal computer. Il passaggio di discretizzazione e integrazione è risolto da NEURON, ma i modelli matematici per ogni meccanismo della cellula deve essere ricavato in forma esperimentale. 62 Meccanismo Na KV KIR KA KM Ca CaHV KCa LKG1 LKG2 Localizzazione Assone, hillock Assone, hillock Soma Soma Soma Soma, dendriti Soma, dendriti Soma, dendriti Tutti i compartimenti Dendriti Referenze Magistretti et al. (2006)[23] D’Angelo et al. (2001)[6] e Nieus et al. (2006)[27] Tabella 6.1: Meccanismi usati nella simulazione e la loro localizzazione. Questa sezione è una raccolta dei risultati ottenuti negli ultimi anni da diversi team che lavorano nella ricreazione di modelli neuronali realistici. Molti di questi modelli sono monocompartimentali, data la struttura elettrotonica delle cellule dei granuli. Ma grazie a questo steso motivo è possibile generare modelli multicompartimentali usando gli stessi parametri già presenti in altri lavori di simulazione con minime modifiche. Alcuni meccanismi hanno una correzione data dal Q10 . Questa correzione è stata inclusa da Nieus et al. (2006)[27] per tenere conto dei cambiamenti di temperatura negli sperimenti. La correzione a 30◦ C dovrebbe risultare negli stessi valori dei parametri nel articolo di D’Angelo et al. (2001)[6]. 6.2.1 Meccanismo di dispersione LKG1 Questo semplice meccanismo è quello che ristabilisce la concentrazione degli ioni ai loro valori a riposo. Questo meccanismo è simile a quello già trovato nel modello di Hodgkin-Huxley e ha delle dinamiche molto semplici. La corrente passante per il canale è Il = gl (Vm − El ) (6.1) Questo tipo di canale si trova sulla superficie di tutta la cellula. 6.2.2 Meccanismo di dispersione di GABAA Questo è un meccanismo di dispersione dipendente dall’attivazione persistente dei recettori di tipo GABAA [3] molto simile in funzionamento alla corrente di dispersione LKG1. Questo produce un’inibizione costante. IGABA = gGABA (Vm − EGABA ) 63 (6.2) 6.2.3 Dinamiche del primo ordine del Ca Le dinamiche della concentrazione di Ca intracellulare è data da d[Ca] ICa =− − β([Ca] − [Ca]0 ) (6.3) dt 2F Ad dove F è la costante di Faraday, A è la superficie della cellula, d è la profondità di una ”shell” nella cellula. Il parametro β determina la dispersione di calcio. Quando non ci sono correnti di calcio la concentrazione interna [Ca] tende a [Ca]0 La superficie della cellula è stata stimata usando il valore esperimentale della capacità della membrana (3 pF[5]), assumendo che la capacità specifica della membrana sia di 1 µF/cm2 e la cellula di forma sferica, considerando anche che il contributo alla superficie totale dei dendriti e l’assone sia trascurabile. Questo meccanismo sembra essere più intenso nelle vicinanze dei terminali dendritici, anche se si trova su tutta la cellula[10]. 6.2.4 Dinamiche dei canali Ca Oltre alle dinamiche del Ca intracellulare, si possono trovare canali di Ca controllati dal potenziale della membrana. Questo tipo di canale ha due stati di attivazione e uno di inattivazione. Le equazioni che caratterizzano questi canali sono gCa = gCa ¯ s2 u ICa = gCa (V − ECa ) ds = αs (1 − s) − βs s dt du = αu (1 − u) − βu u dt V − Vα(x) αx = Ax exp kα(x) V − Vβ(x) βx = Bx exp kβ(x) (6.4) Nelle equazioni è stato contrassegnato con x la variabile, sia s oppure u, in quanto le equazioni sono identiche. Il funzionamento di questo canale è standard, rispetto ai modelli di Hodgkin-Huxley, in quanto l’apertura dei canali segue una legge stocastica e i parametri α e β sono alla Boltzmann. Questi ultimi devono essere corretti a seconda la temperatura sperimentale usando un Q10 (20) = 3[27]. Nella simulazione questa è di 30◦ C. 6.2.5 Dinamiche dei canali K Diversi tipi di canali di potassio sono presenti nella cellula del granulo. 64 Canale K-V Questo canale e dipendente dal potenziale della membrana e sono presenti prevalentemente nell’assone. questo canale dipende da un singolo stato n. Secondo la parametrizzazione data da Gutfreund et al.[13] le equazioni che guidano l’andamento nel tempo di questo tipo di canale sono gK = g¯K n4 IK = gK (V − EK ) dn = αn (1 − n) − βn n dt An exp(V − Vα(n) ) αn = (1 − exp(Vα(n) − V )/kα(n) ) V − Vβ(n) βn = Bn exp kβ(n) (6.5) I parametri α e β vengono corretti con un valore del Q10 (6.3) = 13.5, alla temperatura sperimentale di 30◦ C. Canale K-Ca Questo canale di potassio dipende dalla concentrazione di calcio intracellulare. Dipendono da un solo stato c, ma la dinamica di questo stato dipende sia dalla concentrazione di Ca presente all’interno del compartimento, sia dal potenziale della membrana. Le equazioni per questo canale sono gK = g¯K c IK = gK (V − EK ) dc = αc (1 − c) − βc c dt −1 Bα(a) αc = Aα(c) 1 + exp(V /kα(c) ) [Ca]in −1 [Ca]in βc = Aβ(c) 1 + Bβ(c) exp(V /kβ(c) ) (6.6) L’equilibrio dello stato c viene dato da c∞ = α(c) α(c) + β(c) Se si considera il potenziale della membrana costante, l’equilibrio di c si sposta in su quando la concentrazione interna di Ca aumenta, e quindi la conduttanza del canale è correlata positivamente con [Ca]. La correzione per α e β viene data data Q10 (30) = 1.116. 65 Canale K-A La corrente K-A è di rapida attivazione e rapida inattivazione, dipendente dal potenziale della membrana. Il modello di questo canale è stato riprodotto dai dati riportati in Bardoni e Belluzzi (1993)[2] nell’articolo di D’Angelo et al. (2001)[6]. Questo canale si trova sopratutto nel soma. Possiede due stati a e b di attivazione e inattivazione rispettivamente. La correzione di α e β viene data data Q10 (25.5) = 1.64. gK = g¯K a3 b IK = gK (V − EK ) da a∞ − a = dt τa db b∞ − b = dt τb −1 V − Vα(a) αa = Aα(a) 1 + exp − kα(a) −1 V − Vβ(a) βa = Aβ(a) exp − kβ(a) −1 V − Vα(b) αb = Aα(b) 1 + exp kα(b) −1 V − Vβ(b) βb = Aβ(b) 1 + exp − kβ(b) 1 τn = αa + β a 1 τn = αb + βb V − Va∞ a∞ = 1 + exp − Ba V − Vb∞ b∞ = 1 + exp − Bb (6.7) Canale K-slow La conduttanza di questo canale è dipendente dal potenziale della membrana, ma indipendente dal calcio e insensibile al TEA1 trovato nel soma. Dipende da un solo stato n con le seguenti equazioni 1 Tetraethyl-ammonium Cl− 66 gK = g¯K n IK = gK (V − EK ) dn n∞ − n = dt τn V − Vα αn = Aα exp kα V − Vβ βn = Aβ exp kβ 1 τn = αn + βn V − V∞ n∞ = 1 + exp − Bn (6.8) Canale K-IR Il canale di potassio di tipo IR (inward rectifier) è di tipo rettificatore. Si trova nel soma e possiede un solo stato d. Le equazioni per questo canale sono gK = g¯K d IK = gK (V − EK ) dd = αd (1 − d) − βd d dt V − Vα(d) αd = Aα(d) exp − kα(d) V − Vβ(d) βd = Aβ(d) exp − kβ(d) (6.9) La correzione di α e β viene data data Q10 (20) = 3. 6.2.6 Dinamiche dei canali Na Nella cellula dei granuli sono presenti tre tipi di canali di sodio. Per questi canali sono state presse le ricostruzione in Magistretti et al. (2006)[23] come indicato in Nieus et al. (2006)[27] e quindi il modello consiste in un solo schema cinetico di 13 stati (figura 6.2) come in Raman & Bean (2001)[30]. Questo singolo modello tiene conto di tutti i tipi di canali di sodio, e l’equazione per il flusso di corrente di sodio è 67 C1 C3 C4 C5 γ δ n1 · α · a n2 · α · a n3 · α · a n4 · α · a I2 I3 I4 I5 n4 · β · b n3 · β · b n2 · β · b n1 · β · b O Oon Oof f Con · a4 n4 · α n1 · β Cof f · b4 Con · a3 n3 · α n2 · β Cof f · b3 Con · a2 n2 · α n3 · β Cof f · b2 Con Cof f I1 C2 Con · a Cof f · b n1 · α n4 · β γ δ I6 Figura 6.2: Schema cinetico a 13 stati per i canali di sodio. gN a = gN ¯ aO IN a = gN a (V − EN a ) V α = Aα exp Vα V β = Aβ exp Vβ V ζ = Aζ exp Vζ 1 Oon 4 a= Con 1 Oof f 4 b= Cof f 6.3 (6.10) Simulazione della cellula dei granuli La simulazione della cellula viene eseguita in NEURON, implementando i meccanismi cellulari in file NMODL e la topologia della cellula in una classe di python, mentre il controllo della simulazione viene eseguita da uno script in python. Questo script raccoglie i dati della simulazione e gli salva in un file, per successivamente studiare il comportamento della cellula simulata e generare delle visualizzazioni. La cellula è stata divisa in diversi compartimenti, dove si vanno a posizionare i meccanismi cellulari. Il soma, composto da un solo compartimento, in questa prima simulazione, viene stimolato da un’elettrodo invece che da uno stimolo presinaptico. Risultati La cellula esibisce un comportamento oscillatorio, generando AP in successione. Data la struttura elettrotonica compatta del granulo, non esiste in pratica un ritardo tra la generazione del AP nel hillock e la propagazione verso gli altri compartimenti, in particolare verso i dendriti e non c’è un 68 ζ OB Figura 6.3: Andamento nel tempo del potenziale della membrana in funzione della corrente dell’elettrodo. La corrente viene iniettata a 40ms. importante decremento nel potenziale della membrana. In effetti, una stima della lunghezza elettrotonica della cellula dovrebbe dare valori tra 0.01 e 0.1. Anche se i risultati della simulazione non differiscono di molto con gli attuali modelli monocompartimentali, bisogna notare che questo a priori non era necessariamente vero, in quanto la lunghezza elettrotonica dipende fortemente della geometria, essendo minore per un modello compatto a forma di sfera, rispetto a un lungo cilindro e la distribuzione delle conduttanze e i diversi diametri dei compartimenti giocano un ruolo importante. Inserendo una corrente nel soma da 4pA fino a 25pA si può osservare che la cellula ha una soglia di 10pA approssimativamente. Correnti più basse depolarizzano la membrana ma senza generare AP. Oltre i 10pA la cellula genera AP con un ritardo per il primo sparo inversamente proporzionale alla corrente inserita e una frequenza quasi linearmente proporzionale a la corrente. Le correnti ioniche in figura 6.4 solo le correnti totali misurate nel soma per il potassio e nell’assone per il sodio. Diversi compartimenti possono avere Figura 6.4: Correnti ioniche totali misurate nel soma di K e nel assone di Na con uno stimolo di 10pA. 69 Figura 6.5: A sinistra: Concentrazione di Ca interno nel soma. A destra: Flusso di corrente di Ca nel soma. diversi valori di queste correnti oppure potrebbe non avere alcuni meccanismi e quindi non avere una corrente associata a quel determinato meccanismo ionico. Ad esempio i canali di sodio sono stati implementati solo nel hillock e l’assone. Misure delle correnti ioniche in altri compartimenti sono possibili comunque con poche modifiche al codice della simulazione. Le correnti registrate comunque non sono vere correnti, ma densità di correnti ioniche, misurate in mA/cm2 . La vera corrente dipende dalla superficie del compartimento. Per esempio, in figura 6.5 vengono indicate le correnti del calcio nel soma. Per la simulazione il soma è un cilindro di lunghezza e diametro uguale a 5.8µm, cioè il soma ha un’area superficiale di circa 10−6 cm2 . Quindi la corrente di calcio nel soma ha un pico di 5pA. Il segno della corrente indica se è entrante o uscente. Nel caso del potassio, questa corrente è uscente dalla cellula, simile come è nel modello di Hodgkin-Huxley, mentre le correnti di sodio e calcio sono entranti. Essendo che tutti questi ioni sono positivi, le correnti di sodio e calcio depolarizzano la membrana, mentre che il potassio la repolarizza. In figura 6.5 c’è anche la concentrazione di calcio nel soma nel tempo, durante la generazione di impulsi. Questa concentrazione è maggiore nei terminali dendritici nel glomerulo e ha un importante ruolo nei processi sinaptici. Si può anche osservare come le correnti siano tutte rettificate, cioè vano in un solo senso. In effetti, la corrente di dispersione compie un ruolo importante nel ridistribuire la concentrazione degli ioni tra l’interno e l’esterno della cellula. L’iniezione della corrente dell’elettrodo nella simulazione comincia a 40ms, per dare il tempo alla cellula di raggiungere l’equilibrio di tutti i suoi stati. Questo permette anche di non essere nella situazione in cui la corrente viene inserita fuori equilibrio, generando AP spuri. Aumentando la corrente dell’elettrodo, come detto prima, aumenta la frequenza degli impulsi generati in forma approssimativamente lineare con questa. Data la natura non stocastica della simulazione e il tempo limitato a 1s di simulazione, non è stato possibile osservare un innalzamento graduale 70 Figura 6.6: A sinistra: Tempo del primo AP generato in funzione della corrente. A destra: frequenza degli impulsi generati in funzione della corrente. della frequenza appena dopo la soglia, cosi la cellula parte con pulsazioni di circa 25Hz. Il tempo di primo sparo invece è più graduale e dipende dal fatto che il condensatore generato dalla membrana deve caricarsi, e la cellula non spara fino a raggiungere la soglia. Notare però che dopo il primo AP i successivi vengono generati più velocemente e hanno una maggiore intensità (figura 6.3). Questo accade anche nel semplice modello di Hodgkin-Huxley ed è dovuto alla non linearità delle equazioni, che dipendono anche dalle derivate delle variabili. In questo modello, più complesso, questo fenomeno può anche essere attribuito all’accumulo di ioni dentro della cellula, che la rendono più positiva. Notare in effetto che a differenza del modello di Hodgkin-Huxley, la tensione della membrana non va sotto il valore a riposo. 71 72 Capitolo 7 Modelli per le sinapsi 7.1 Il glomerulo Il glomerulo è una piccola massa di terminali nervosi nello strato granulare del cervelletto. Consiste nei dendriti della cellula dei granuli, i terminali delle fibre afferenti muscoidi e i terminali assonici delle cellule di Golgi. In questo punto è dove avviene la trasmissione sinaptica eccitatoria da parte delle fibre muscoidi e inibitoria da parte delle cellule di Golgi, che inviano i suoi segnali al granulo. Questi terminali vengono avvolti in uno strato di cellule gliali. Nel glomerulo, una fibra muscoide può dare un segnale eccitatorio a decine di granuli. In modo approssimativo, ogni glomerulo ha 50 dendriti granulari, 210 cifre dendritiche e 230 giunzioni sinaptiche[14]. In questo lavoro, il glomerulo viene considerato come formato da un dendrite granulare l’assone della fibra muscoide e l’assone della cellula di Golgi, in quanto viene simulato un singolo granulo. In questo glomerulo accade la trasmissione del segnale nervoso e la trasmissione di messaggeri retrogradi. Del volume del glomerulo, più del 50% viene occupato dai dendriti granulari, 34% da febbri muscoidi e 13% di assoni delle cellule di Golgi[18]. 7.2 Trasmissione sinaptica e plasticità I segnali che arrivano al glomerulo dalle fibre muscoidi e le cellule di Golgi producono nei terminali sinaptici il rilascio di molecole che possono legarsi ai recettori sinaptici nelle spine dendritiche delle cellule dei granuli. Le fibre muscoidi rilasciano glutammato, mentre la cellula di Golgi rilascia molecole di GABA. I neurotrasmettitori possono arrivare direttamente a i recettori postsinaptici, generando una risposta rapida rispetto al segnale presinaptico, oppure possono diffondersi nello spazio dentro la glia e legarsi a recettori distali, generando una risposta lenta o anche ritardata. Il meccanismo di rilascio di neurotrasmettitore nelle vescicole avviene mediante l’esocitosi, cioè la fusione della vescicola con la membrana cellulare, 73 il che produce il versamento del contenuto della vescicola all’esterno della cellula. L’esocitosi nelle cellule nervose avviene dopo un incremento della concentrazione di Ca2+ . Alcuni passi sono coinvolti nel rilascio di neurotrasmettitore. Per primo le vescicole devono essere trasportate vicino alla parete cellulare dove si attaccano a questa. Un aumento locale del Ca2+ permette una serie di reazioni che finiscono con l’esocitosi e il rilascio del contenuto nella vescicola all’esterno della cellula. La vescicola vuota ritorna dentro il corpo cellulare per rigenerare il suo contenuto e continuare il ciclo di rilascio. Quando il neurotrasmettitore è stato rilasciato, questo può legarsi ai recettori postsinaptici. Le molecole di glutammato possono legarsi ai recettori AMPAr e NMDAr, mentre le molecole di GABA si legano ai recettori GABAr. Quando il neurotrasmettitore si lega con il recettore, questo si apre come i normali canali ionici, permettendo il passaggio di ioni (principalmente Ca2+ ) dentro della cellula aumentando localmente il potenziale della membrana, generando un EPSP. Nel caso del GABAr, che è un recettore di tipo inibitorio, il tipo di ione che attraversa il canale sono gli ioni di cloruro (Cl− ) e questo fa tendere il potenziale della membrana verso il potenziale di Nerst per questo ione, che è circa -65mV. Bisogna notare che esistono due tipi di recettore GABA: di tipo A e tipo B. Il recettore GABAA è di tipo ionotropico, cioè permette il passaggio diretto di ioni, mentre l’altro tipo, GABAB è di tipo metabotropico, cioè non permette il diretto passaggio di ioni, ma scatena una serie di reazioni che alla fine producono una variazione nel potenziale della membrana. 7.2.1 Ipotesi quantale Il rilascio di neurotrasmettitore non avviene continuamente, ma in piccoli pacchetti chiamati quanti, che hanno una piccola probabilità di essere rilasciati, anche se non c’è uno stimolo nel terminale sinaptico. Questa teoria è dovuta a B. Katz nei suoi studi sulle giunzioni neuromuscolari[21] ottene il premio Nobel nel 1970. Il rilascio di neurotrasmettitore avviene in maniera puramente casuale e quindi ad ogni singola vescicola sinaptica viene assegnata una probabilità p indipendente da altre vescicole di rilasciare spontaneamente il suo contenuto. Se nel terminale sinaptico ci sono n siti di rilascio, allora la probabilità totale di rilascio di neurotrasmettitore è m = np Questo significa che il rilascio segue una distribuzione binomiale. Ma il fatto che la probabilità p sperimentalmente si stima molto bassa e n invece molto alta, si può studiare questo rilascio con un modello Poissoniano. Questo permette di studiare la distribuzione dei dati raccolti sperimentalmente. L’evidenza che il neurotrasmettitore sia rilasciato in pacchetti discreti sta nell’esistenza di potenziali postsinaptici in miniatura e la loro misurazione. 74 Figura 7.1: Simulazione con metodo Monte Carlo del rilascio di neurotrasmettitore secondo l’ipotesi quantale. A sinistra: potenziali postsinaptici in miniatura. Si possono osservare picchi in corrispondenza dei multipli del quanto fondamentale 0.4mV. A destra, la distribuzione del potenziale dovuta a le diverse incertezze nelle misure. Questi potenziali in miniatura venivano osservati nel terminale postsinaptico anche senza attività presinaptica con un’ampiezza di 0.4mV. Ma potevano trovarsi con minore probabilità potenziali postsinaptici di 0.8, 1.2, 1.6, etc. mV. Questo comportamento permette di dedurre che esiste un quanto fondamentale e che i potenziali generati nella parte postsinaptica sono multipli di questo quando fondamentale. 7.2.2 Plasticità sinaptica La trasmissione sinaptica può variare la sua effettività a seconda del tipo di stimolo presinaptico. la variazione nell’effettività sinaptica può essere un potenziamento o una depressione e avere breve o lunga durata. I cambiamenti a lunga durata (LTP e LTD) si credono alla base dei meccanismi di memoria e apprendimento. Nel caso della parte presinaptica, la plasticità può essere dovuta a un incremento nella probabilità di rilascio delle singole vescicole, dovuto ad un accumulo di Ca2+ nel sito di rilascio, il che migliora la esocitosi, producendo un potenziamento. Ma quando l’attività presinaptica è continua, il neurotrasmettitore disponibile può esaurirsi più velocemente di quello che ne viene rigenerato. Con il tempo questo produce una depressione nella quantità di neurotrasmettitore rilasciato e quindi un minor EPSP. Nella parte postsinaptica invece, l’accumulo di neurotrasmettitore che produce un’attivazione persistente dei recettori, o cambiamenti nella cellula possono produrre altri tipi di plasticità. La cellula granulare presenta diversi tipi di plasticità. Nella sinapsi tra la fibra muscoide e il granulo, cambiamenti nella probabilità di rilascio dovuto 75 a certi tipi di modelli di attività, attivazione dei recettori NMDA e l’attivazione di recettori metabotropici di glutammato. Un aumento di Ca2+ nella parte postsinaptica attiva l’enzima NO sintasi (NOS), che produce ossido nitrico a partire da arginina. Il NO prodotto si diffonde verso la parte presinaptica, attivando l’enzima guanylyl ciclasi solubile (sGC), che produce guanylyl monofosfato ciclico (cGMP) a partire da guanylyl trifosfato (GTP). Questa serie di reazioni genera una forma di LTP presinaptico, dipendente dallo stato della cellula postsinaptica. Da altra parte, il granulo ha un suo meccanismo d’espressione per la plasticità, detta intrinseca. Raffiche di impulsi (chiamati “theta burst”) dalle fibre muscoidi aumentano la eccitabilità intrinseca del granulo[1], risultato di un incremento nella resistenza di ingresso e un abbassamento nella tensione di soglia, migliorando l’azione dei EPSP e facilitando la produzione di AP. Altri tipi di cambiamenti sono dovuti a cambiamenti nelle proprietà dei recettori. 7.2.3 Modelli di plasticità a breve termine Si riferisce come plasticità a breve termine il fenomeno in cui l’efficacia sinaptica cambia nel tempo in un modo che riflette la storia dell’attività presinaptica. Come detto prima, di questo tipo di plasticità ci possono essere una depressione o un potenziamento. La depressione viene causata da uno svuotamento veloce del neurotrasmettitore disponibile per il rilascio per via di un’intensa attività presinaptica, mentre il potenziamento viene causato da un influsso di calcio nel terminale assonico durante un AP, il che incrementa la probabilità di rilascio di neurotrasmettitore. Questo tipo di plasticità ha una durata al massimo di qualche secondo e se la causa di questo cambiamento scompare, rapidamente si ritorna a un livello di efficacia sinaptica normale. Il processo di rilascio di neurotrasmettitore è complicato. Quindi fare un modello che rappresenti la realtà richiede molte semplificazioni. Il modello proposto da Tsodyks e Markram[35] è un modello a tre stati per il rilascio di neurotrasmettitore. Gli stati sono la quantità di neurotrasmettitore disponibile per il rilascio, quella persa per il rilascio e quella pronta per essere ricuperata. Questo è una semplificazione di ciò che accade durante la trasmissione sinaptica: dall’ipotesi quantale si sa che arrivato un impulso al terminale presinaptico viene espulsa una porzione P di neurotrasmettitore. Questo neurotrasmettitore espulso non è più disponibile fino che il metabolismo non lo ripristina dentro delle vescicole che poi dovranno essere trasportate vicino la parete cellulare per ricominciare il ciclo. In questo lavoro, no si usa proprio il modello proposto da TsodyksMarkram, ma invece una derivazione riportata in Nieus et al. 2006[27], che tiene conto anche dei cambiamenti della probabilità di rilascio in ba76 se all’attività presinaptica. Questo modello consiste in quattro equazioni differenziali accoppiate dX Z − P Xδ(t − tspike ) = dt τR dY Y = − + P Xδ(t − tspike ) dt τt dZ Z Y − = dt τt τR dP P = − − p(1 − P )δ(t − tspike ) dt τf (7.1) dove X è la quantità di trasmettitore disponibile per il rilascio, Y è il trasmettitore già rilasciato e Z il trasmettitore ricuperato. P è la probabilità di rilascio, che come si vede nelle equazioni, ad ogni impulso (rappresentato mediante la delta di Dirac) incrementa di p(1 − P ) dove p è la probabilità iniziale, mentre quando non ci sono impulsi decade fino ad annullarsi. Questo sistema di equazioni ha una soluzione analitica. Integrando la equazione differenziale per P (t) usando il metodo della trasformata di Laplace si ottiene una soluzione che decade esponenzialmente per ogni t P (t) = P (t0 )e−τf t ma nei punti ti dove c’è un impulso la funzione diventa P (t+ ) = p(1 − P (t− )) dove t− e t+ sono i tempi prima e dopo l’impulso della delta di Dirac. Cosi, avendo una successione di impulsi a tempi tn , la soluzione generale sarebbe i h (7.2) P (t) = p 1 − P (tn−1 )e−(tn −tn−1 )/τf e−(t−tn )/τf con condizione iniziale P (t0 ) = P (0) = 0, per ogni t > tn e per n > 0, in quanto prima del primo impulso la funzione vale zero, data la condizione iniziale. Questa funzione è ricorsiva, in quanto dipende dal tempo trascorso dall’ultimo impulso e permette di trovare il valore della probabilità di rilascio al prossimo impulso. Uguale ragionamento segue per X e Y : lo stato X viene ricaricato dallo stato Z. Quando arriva un impulso una frazione P · X viene spostata verso lo stato Y . La quantità di neurotrasmettitore si considera conservata, per cui vale Z =1−X −Y L’equazione 7.2 permette di trovare lo stato stazionario per la probabilità P , cioè la situazione in cui ad ogni impulso la probabilità torna ad essere quella nel impulso precedente P (t) = p 1 − (1 − p)e−1/τf ν 77 (7.3) Figura 7.2: A sinistra: Simulazione del modello di Tsodyks-Markram con un segnale presinaptico a 100Hz. I parametri sono τf = 10.8 ms, τt = 3.0 ms, τR = 35.1 e p = 0.4. A destra: Guadagno in funzione della frequenza per una sinapsi dominata STD (parametri come nel grafico a sinistra) e una sinapsi dominata STF. I parametri per la sinapsi STF sono: τf = 750.0 ms, τt = 50.0 ms, τR = 20.0 e p = 0.15 con ν la frequenza degli impulsi presinaptici. Questo permette a sua volta di trovare lo stato stazionario per la quantità di trasmettitore rilasciato in funzione della frequenza. Essendo che in questo modello entrano in competizione un meccanismo di potenziamento (L’incremento della probabilità di rilascio) e uno di depressione (l’esaurimento del trasmettitore), ci si aspetta che ci sia una frequenza dell’attività presinaptica che ha una risposta massima. In figura 7.2 a destra si possono osservare due modelli con diversi parametri. Per uno di questi non c’è una frequenza di risonanza, in quando il meccanismo di depressione vince per ogni frequenza. Invece per l’altro si può osservare una frequenza di risonanza attorno i 15Hz. In realtà questa non è tutta la storia, in quanto diversi modelli di attività presinaptica possono scatenare fenomeni diversi (vedere figura 7.3). 7.3 I recettori sinaptici La cellula granulare implementa tre tipi di recettori: AMPA e NMDA che agiscono come recettori eccitatori e GABAA che è inibitorio. La risposta postsinaptica di questa cellula viene prodotta sia da un rilascio diretto di trasmettitore verso i recettori e anche da la diffusione di glutammato nel glomerulo. 7.3.1 AMPA Per i recettori AMPA, che sono localizzati nella fessura sinaptica, la concentrazione di glutammato è ottiene combinando un pulso diretto e un onda 78 Figura 7.3: Simulazione del modello di STP presinaptico per attività a raffica (theta burst) con frequenza di raffica di 300Hz e frequenza di treni di 10Hz. In alto lo stato X. In basso lo stato Y. Notare come c’è un mix di potenziamento (seconda spike nei treni) e di depressione (secondo treno). kd− S · kd+ C S · ko+ ko− O Figura 7.4: Schema cinetico a 3 stati per il recettore AMPA. diffusiva. Se il glutammato rilasciato dipende dalla variabile Y nel modello di Tsodyks-Markram, allora la si può scrivere come T = Ts + Td = Y Ts(max) + Td(max) Il valore riportato in Nieus et al. 2006[27] per Ts(max) è di 1mM che agisce per 0.3ms. Modello a 3 stati per il recettore AMPA Un modello a tre stati per il recettore AMPA è quello di figura 7.4 a tre stati. Lo stato O è quello in cui il recettore permette il passaggio di ioni, C è lo stato chiuso e D lo stato disabilitato. Nel modello la somma C +D+O =1 viene conservata. Il modello si comporta come una semplice catena di Markov, dove gli stati si diffondono passivamente verso lo stato C. All’arrivo del recettore la variabile S, descritta come S= T2 (T + kB )2 che è il modello di attivazione di una specie chimica, acquisisce un valore diverso da zero, il che permette la diffusione di C in D e O. Con i canali 79 Figura 7.5: Simulazione dello schema cinetico per il recettore AMPA. A sinistra: EPSC generato. Notare la depressione, dovuta anche in parte alla fatica sinaptica, ma sopratutto per via dell’accumulo dello stato D, il che rende il recettore meno sensibile a stimoli di glutammato. A destra: i tre stati del recettore AMPA durante uno stimolo di 100Hz presinaptico in condizioni normali di potenziale di membrana. aperti in una proporzione O i recettori AMPA permettono il passaggio di una corrente di ioni uguale a i = gmax O(Vm − Er ) dove gmax è la conduttanza massima dei canali e Er è il potenziale di inversione. Questo meccanismo presenta una forma di depressione in base all’attività presinaptica, considerando che quando S è diverso da zero gli stati si diffondono verso lo stato D, il che sottrae al sistema la capacità di essere disponibile per lo stato O, riducendo la conduttanza del recettore e di conseguenza anche le EPSC. Dovuto al glutammato diffuso che arriva al recettore AMPA, questo acquisisce anche una componente lenta nel EPSP generato. 7.3.2 NMDA I recettori NMDA nei granuli, sono localizzati lontani dalla sinapsi, questi vengono stimolati solo dal glutammato diffuso nel glomerulo. Questo significa che la sua risposta è lenta e persistente per più tempo rispetto al EPSP generato dai recettori AMPA. Inoltre, il recettore NMDA ha un blocco di Mg2+ quando il potenziale della membrana è basso, per cui il recettore permette il passaggio di ioni (prevalentemente Ca2+ ) quando il potenziale della membrana è abbastanza alto da rimuovere il blocco. 80 C2 T · k2+ k2− C1 T · k1+ k1− C ko+ ko− O kd+ kd− D Figura 7.6: Schema cinetico a 5 stati per il recettore NMDA. Modello a 5 stati per il recettore NMDA Per questo modello non sono disponibili schemi cinetici per le cellule granulari nel cervelletto. Questo modello è stato adattato in Nieus et al. (2006)[27] seguendo i modelli sviluppati da Rosenmund et al. (1995)[31]. Lo schema cinetico per questo modello è in figura 7.6. Anche in questo caso, quando i recettori non vengono stimolati dal trasmettitore, gli stati tendono a diffondersi verso lo stato C2 , mentre all’arrivo del glutammato gli stati possono diffondersi a lo stato C, dove questo diffonde spontaneamente verso D e O. Come nel caso del recettore AMPA, lo stato O governa l’apertura dei canali ionici, ma in questo caso bisogna tenere conto del blocco di magnesio. Quindi un modello per la corrente ionica attraverso il recettore NMDA è i = gmax BO(Vm − Er ) dove il blocco di magnesio è descritto da 1 B= 1+e − Vm −VM g kM g dove VM g = -20mV e kM g = 13mV. Nelle simulazioni, lo stato aperto e disabilitato del recettore NMDA si mostra molto sensibile a piccole variazioni dei parametri. In effetti, come si può vedere in figura 7.7, questi sono piccoli rispetto gli altri stati e difficilmente superano una popolazione totale del 5% il che li rende molto suscettibili ai cambiamenti dei parametri del modello, ma anche poco sensibili a notevoli differenze di stimolazione e questo permette che il recettore sia attivo per un tempo relativamente lungo dopo la fine degli impulsi presinaptici. 7.3.3 GABA Questo recettore nelle cellule granulari riceve il segnale inibitorio dalle cellule di Golgi legandosi con una molecola di GABA. L’apertura di questo canale permette il passaggio di ioni di cloruro (Cl− ) iperpolarizzando la membrana generando un IPSP. 81 Figura 7.7: Simulazione dello schema cinetico per il recettore NMDA. A sinistra: confronto tra la corrente generata dall’attività presinaptica nel recettore NMDA quando il potenziale della membrana è di -70mV (in blu) e -40mV(in verde), cambiamento dovuto al blocco di Mg2+ . A destra: i cinque stati del recettore NMDA durante uno stimolo di 100Hz presinaptico in condizioni normali di potenziale di membrana. Modello per il recettore GABA Il modello per questo recettore è stato derivato dallo schema cinetico riportato in Pugh & Raman 2005[29] con lo schema cinetico come in figura 7.8. Il modello presenta diverse unità, dove il numero al pedice rappresenta se c’è un singolo o doppio legame di molecole con il recettore. Si può osservare che gli stati passano forzatamente mediante la presenza di GABA da uno stato all’altro. La porzione di canali aperti è descritta dalle due forme O, per cui la corrente che attraversa i recettori è i = gmax (OA1 + OA2 ) (Vm − Er ) OA1 DA2f r3 d3 CA2 a1 b1 a2 b2 OA2 2kof f kon T kof f 2kon T C d1 r1 d2 r2 DA2 CA1 r dT DA1 Figura 7.8: Schema cinetico a 5 stati per il recettore GABA. 82 FeIII FeII FeII·O2 FeIII·NOHA FeII·NOHA FeII·O2 ·NOHA FeIII·NO FeII·NO Figura 7.9: Schema cinetico per la produzione di NO. Nell’assenza di GABA, gli stati si diffondono verso lo stato C. Come negli altri recettori, la somma di tutti gli stati del sistema fa uno e si conserva nel tempo. 7.4 Ossido nitrico come messaggero retrogrado L’aumento di Ca intracellulare, sia dovuto al rilascio dalle riserve interne della cellula, oppure da un flusso di ioni per l’apertura di un particolare canale, ad esempio il recettore NMDA, provoca, mediante il legame con il calmodulin, l’attivazione della enzima NO sintasi (NOS), che catalizza la produzione di ossido nitrico (NO) e citrulina usando come base l’arginina[12] (Arg). Ci sono tre isoforme di NOS, dalle quale il NOS neuronale (nNOS) è quello coinvolto nella plasticità sinaptica. L’ossido nitrico è un importante messaggero cellulare e nel caso della cellula granulare, compie un importante ruolo nella plasticità a lungo termine[24]. In effetti, la molecola di NO può liberamente attraversare la membrana cellulare e questo permette che la molecola arrivi al terminale presinaptico, quando viene prodotta nel glomerulo. Una volta arrivato al terminale presinaptico, il NO può legarsi a l’enzima guanylyl ciclasi (GC), che produce guanylyl monofosfato ciclico (cGMP) a partire da guanylyl trifosfato (GTP). Il cGMP scatena altre reazioni che finiscono con indurre una forma di potenziamento a lungo termine presinaptico mediante l’aumento delle correnti di Ca2+ e il suo accumulo, il che migliora l’esocitosi. Il processo di produzione di NO è complesso e richiede molti passaggi intermedi. L’enzima NOS provoca l’idrossilazione della molecola di Arg e successivamente questa molecola intermedia di N ω -idrossi-L-arginina (NOHA) viene ossidata per produrre NO e citrulina. Queste reazioni consumano una molecola di O2 e usano NADPH1 Lo schema cinetico per la serie di reazioni che si tengono durante la produzione di NO sono illustrate in figura 7.9. Le reazioni cominciano con il loro eme nello stato ferrico (FeIII) che si riduce mediante la reazione FeIII + e− → FeII 1 Forma ridotta del nicotinammide adenina dinucleotide fosfato. 83 (7.4) Figura 7.10: Simulazione dello schema cinetico per l’enzima NOS. A sinistra: velocità di produzione di NO. A destra: NO prodotto per molecola di NOS. Successivamente una molecola di ossigeno si lega con il eme producendo FeII·O2 , il che inizia la catalisi, trasformando Arg in NOHA. Una successiva riduzione e il guadagno di altra molecola di ossigeno FeIII · NOHA → FeII · NOHA → FeII · O2 · NOHA (7.5) questo porta all’ossidazione del NOHA e la produzione di NO e citrulina. Il NO rimane legato al eme FeIII dove può liberarsi e ritornare all’inizio del ciclo oppure l’eme può ridursi a FeII·NO dove ancora il NO può essere rilasciato per due vie: FeII · NO → FeII + NO FeII · NO + O2 → FeIII + NO− 3 (7.6) la prima di queste reazioni è molto lenta (ha una costante di tempo di 1080s nel modello). Il modello per la simulazione di questa reazione segue da vicino la catena di Markov nella figura 7.9. I parametri del modello sono stati presi dal lavoro di Haque, Tejero, Bayachou 2013[15]. In figura 7.10 ci sono la velocità di produzione e la quantità prodotta di NO per molecola di NOS. La velocità di produzione decade progressivamente a circa 150ms dovuto alla produzione di NO che inibisce l’enzima per via di un accumulo nello stato FeII·NO che ha un tempo di vita molto lungo. Nella simulazione del modello si assume che ci sia sempre presente Arg, NADPH e O2 abbastanza da rendere il modello dipendente solo dal Ca2+ . Il modello simula la velocità di produzione “per molecola”, per cui si deve avere la concentrazione di molecole di NOS per avere un modello realistico della produzione di NO nel glomerulo. Nel articolo di Maffei et al. 2003[22] si riporta un rilascio massimo di 6.2 ± 2.8 nM dovuto ad un stimolo ad alta frequenza durante un secondo, seguito da un decadimento con costante di 84 tempo 3.6s. Questo permette di stimare una concentrazione di NOS nella parte postsinaptica di circa 2.5nM nell’ipotesi che questo stimolo causi un influsso di Ca abbastanza alto da saturare l’attivazione dell’enzima. Nelle simulazioni svolte si trova però che per arrivare a queste quantità, sono necessarie al meno 2.7nM di NOS con un EC50 di 400± 86.3 nM e con coefficiente di Hill di 4.0, seguendo la legge 1 A= 1+ EC50 H x (7.7) dove A è l’attività dell’enzima, che va da zero a uno, x è la concentrazione del soluto associato e H è il coefficiente di Hill. Conseguenze nell’attività presinaptica Il NO prodotto nella parte postsinaptica si può propagare liberamente verso il terminale presinaptico, dove può legarsi con GC e produrre cGMP il che produce una forma di LTP. La quantità di NO che arriva alla parte presinaptica dipende dalla distanza dal punto di produzione al punto di arrivo, in quanto il NO si diffonde in tutto il volume del glomerulo. Questo permette di stimare che una frazione costante del NO prodotto sia presente per attivare il GC. Ma c’è anche da tenere in conto della quantità di GC presinaptico e il tempo di decadimento del legame GC·NO per lo studio della plasticità presinaptica. In Griffiths et al. 2003[11] si riporta un EC50 del sGC rispetto al NO di 1.7nM. Concentrazioni fisiologiche di ATP2 (1mM) mediante un complesso meccanismo riduce l’attività del sGC, mentre alte concentrazioni di GTP (100µM) aumenta l’attività. In questo bilancio si arriva ad avere un EC50 di 3.4nM[32]. Questo significa che l’attivazione di sGC dal una concentrazione di NO pari a 6nM (come in Maffei et al. 2003[22]) va dal 63% al 78%. Il coefficiente di Hill è stato riportato di avere il valore di 1.0[11]. Per arrivare vicino alla saturazione, che supponiamo sia più del 95% dell’attività massima dell’enzima, la concentrazione di NO dovrebbe essere al meno di 38nM per un EC50 = 2nM. A questo si deve aggiungere il fatto che la diffusione è in tre dimensioni, quindi l’azione del NO ha un corto rango (al massimo di 1µm) per poter attivare il sGC presinaptico abbastanza da generare cambiamenti nella funzionalità sinaptica. Questo in parte aiuta (anche nelle simulazioni), perché vorrebbe dire anche che il potenziamento è per la sinapsi in un particolare dendrite e non interferisce con altri dendriti nel granulo. Per questo particolare meccanismo non c’è un modello dettagliato o realistico, in quanto il cGMP da solo non produce l’aumento della probabilità di rilascio, ma serve modellare tutta una serie di reazioni che aumentano la corrente di Ca2+ nel terminale presinaptico. L’assone delle 2 Adenosina trifosfato. Una molecola che mediate l’idrolizzazione a ADP rende 30.5kJ/mol di energia a quasi tutte le reazioni metaboliche 85 fibre muscoidi è anche, al momento, un modello semplificato e non contiene informazione esplicita di canali ionici. Quindi si sceglie come modello semplificato un potenziamento diretto della probabilità base in proporzione all’attività dell’enzima sGC. Questo è in parte coerente con l’evidenza che durante il LTP l’attività del sGC è massima, ma potrebbe non contenere una serie di fenomeni a bassa frequenza dell’attività presinaptica. Secondo il lavoro di Sola et al. 2004[33], durante il LTP la probabilità di rilascio aumenta da 40% a 60%. Usando l’equazione di Hill 7.7 per modellare l’attività del sGC si potrebbe introdurre un modello di potenziamento come: (pmax − pmin )[NO] p = pmin + (7.8) [NO] + EC50(N O/sGC) Con questo modello, la cellula raggiunge il LTP già nel primo secondo di stimolazione theta. 7.5 LTP, LTD e dipendenza dal calcio Il lavoro di Gall et al. 2005[10] e posteriormente di D’Errico et al. 2009[9] rivelano una dipendenza tra i cambiamenti sinaptici e la concentrazione di Ca2+ intracellulare. A basse concentrazioni si ha una depressione, mentre un ulteriore incremento porta la sinapsi al LTP. Questi lavori rivelano anche una dipendenza tra il tempo, frequenza o intensità degli impulsi presinaptici e il potenziamento, il che porterebbe a pensare che ogni impulso presinaptico porta ad un accumulo di Ca2+ nelle spine sinaptiche. In questa sezione si segue questa pista per riprodurre il comportamento plastico della sinapsi in funzione dell’attività. Nell’ipotesi che LTP e LTD dipendono da l’attivazione di una enzima dipendente dal Ca2+ , avendo i dati esperimentali come in figura 7.11, si può pensare che LTP e LTD sono due diversi fenomeni che dipendono entrambi dalla concentrazione di calcio intracellulare, ma con diverso livello di attivazione. Se il LTD viene attivato da una bassa concentrazione di Ca2+ mediante i tipici modelli di attivazione di un’enzima (come in eq. 7.7), si può trovare per LTP un EC50 abbastanza alto da generare un minimo. Quindi sommando due modelli e trovando i migliori parametri per i dati di figura 7.11 si ha un modello per la plasticità in funzione della frequenza dell’attività presinaptica. Questo modello non è realistico ne dettagliato, solo descrive la risposta del sistema in base alla frequenza. In più, essendo dipendente esplicitamente dalla frequenza, bisogna creare un collegamento con le dinamiche del Ca2+ . Un semplice modello che dipende dalla concentrazione ci Ca2+ intracellulare non sarebbe corretta, in quanto i buffer di Ca2+ all’interno della cellula porta via il Ca2+ in modo molto veloce, il che non giustificherebbe l’esistenza di cambiamenti a lungo termine dell’efficacia sinaptica. Ma se invece il Ca2+ attiva altri stati con tempi di decadimento 86 Figura 7.11: Dati ricavati dagli esperimenti in D’Errico et al 2009 e best fit del modello scelto. Il potenziamento dell’efficacia sinaptica è in funzione della frequenza del segnale presinaptico. k(Ca2+ ) A B τr Figura 7.12: Schema cinetico per l’accumulo di un ipotetico stato in funzione del Ca2+ . molto lunghi si avrebbe una risposta liscia in funzione del Ca2+ e in più renderebbe possibile una dipendenza monotonica tra l’attività presinaptica e l’accumulo di questo stato. In figura 7.12 c’è un semplice modello per l’accumulo di questo stato. Se si sceglie τr molto alto e la funzione attivazione come k(Ca2+ ) = kA→B [Ca2+ ]H [Ca2+ ]H + k H dove kA→B è invece molto basso, si ha che ogni impulso di Ca2+ manda lo stato A in B che si accumula in modo quasi lineare in funzione alla frequenza, dovuto il basso valore di kA→B . Poi questo stato B va a controllare la plasticità, che ha equazione Q = k1 B B − k2 B + t1 B + t2 (7.9) con un cambiamento diretto nella conduttanza del recettore AMPA come g = (1 + Q)ḡ 87 Questo sarà a sua volta controllato dal glutammato legato ai recettori come di solito. Questo modello in effetti controlla la conduttanza dei recettori AMPA solamente. Questo è motivato dall’evidenza che cambiamenti plastici a lungo termine dipendono dalla fosforilazione del recettore, che è dipendente da Protein Kinase A (PKA), mentre l’inclusione di altre unità nella membrana dipende dall’attivazione di Ca2+ -calmodulin dependent kinase II (CAMKII). Questo motiva la scelta del modello in equazione 7.9 come l’attivazione di due diversi meccanismi che contribuiscono indipendentemente. L’evidenza che i recettori NMDA siano coinvolti nel LTP e che questi, durante il legame con glutammato, permettono l’ingresso di Ca2+ permette di aggiungere all’ipotesi la dipendenza dall’attività del recettore NMDA. Questo permette di stabilire il livello di attivazione per il modello in modo da riprodurre il fenomeno di rivelazione di coincidenza, che consiste nel potenziamento della connessione sinaptica quando l’impulso presinaptico avviene contemporaneamente con un AP postsinaptico. Questo accade perché la depolarizzazione della membrana postsinaptica rimuove il blocco di Mg2+ del recettore NMDA, il che permette il passaggio di un maggiore flusso di ioni Ca2+ dentro la cellula e di conseguenza il potenziamento. Se invece l’impulso presinaptico arriva quando non c’è una depolarizzazione della membrana, questo permette comunque un passaggio di Ca2+ , ma in quantità minore. Tenendo in conto i risultati in Gall et al. 2005[10], la minore concentrazione di Ca2+ dovrebbe produrre un LTD. In figura 7.13 si ha una simulazione del flusso di ioni attraverso il recettore NMDA quando tra il segnale presinaptico e un AP postsinaptico c’è una differenza di tempo ∆t. Un ∆t negativo indica che il segnale presinaptico arriva prima della generazione del AP postsinaptico. Come si può osservare nella figura, quando ci si avvicina a ∆t = 0 si ha un aumento della quantità di Ca2+ introdotto, che si traduce in un aumento nella concentrazione di Ca2+ intracellulare. Se si tiene conto anche del contributo dei canali VDCC che introducono altro Ca2+ durante un AP e dei buffer di Ca2+ che ne portano via questo, si potrebbe avere un indizio dell’esistenza del fenomeno di Spike-timing-dependent plasticity o STDP. Questo consiste in un potenziamento quando esiste una relazione causale tra il segnale presinaptico e l’attività postsinaptica, mentre c’è una depressione in caso contrario. 88 Figura 7.13: Simulazione del flusso di Ca2+ quando si varia il tempo tra lo stimolo del recettore NMDA e la generazione di un AP postsinaptico. In su: stato O del recettore NMDA. Questo è dipende solo dall’attività presinaptica. Al centro: AP generato da un flusso di corrente di 40 pA durante 2 ms. In giù: convoluzione della la corrente generata dal recettore. Questa corrente viene integrata per ottenere la carica attraverso il recettore durante lo stimolo, il che permette il calcolo del numero di ioni di Ca2+ . Per ∆t positivi si dovrebbe avere una linea orizzontale. La linea che cade è dovuta alla limitatezza dell’intervallo d’integrazione. 89 90 Capitolo 8 Simulazione completa della cellula granulare Nei due capitoli precedenti si è assemblato indipendentemente i meccanismi per la cellula e i meccanismi per le sinapsi. In questo capitolo si assemblerà tutto per generare una simulazione completa della plasticità nella cellula granulare. L’intero neurone è stato simulato usando il l’interfaccia Python di NEURON. 8.1 Topologia del modello Il modello in questa simulazione è un modello multicompartimentale, come visto nel capitolo 6 usando la topologia e la geometria del lavoro di simulazione di Diwakar et al. 2009[7]. Con un soma formato da una singola sezione cilindrica di lunghezza e diametro 5.8µm. A questo vengono aggiunti quattro dendriti e un assone. I dendriti sono formati da quattro compartimenti con lunghezza totale di 15µm e diametro 0.75µm, mentre l’assone è formato da 30 compartimenti con lunghezza totale di 70µm e diametro 0.3µm. Nei terminali dendritici distali sono stati posizionati i recettori AMPA, NMDA e GABA. Poi sono stati messi in comunicazione il meccanismo di produzione di NO con la parte presinaptica che produce il rilascio di neurotrasmettitore e quest’ultima con i recettori sinaptici. Al contrario di altri lavori di simulazione, dovuto alla natura bidirezionale delle sinapsi, invece di usare i regolari oggetti NetCon1 in NEURON per la comunicazione dei messaggi, sono stati usati puntatori. In parte la scelta è stata pressa per separare i meccanismi presinaptici da i meccanismi postsinaptici in diversi file .mod e rendere il lavoro più modulare. Da altra parte, per la comunicazione della quantità prodotta di NO postsinaptico alla parte presinaptica, se si avesse usato i NetCon, il modello dovrebbe 1 http://www.neuron.yale.edu/neuron/static/docs/help/neuron/neuron/classes/netcon.html 91 essere stato scritto dentro del meccanismo per il rilascio di neurotrasmettitore e questo vorrebbe di nuovo dire scrivere un meccanismo postsinaptico dentro di un meccanismo presinaptico. In più, avrebbe reso difficile comunicare delle quantità continue nel tempo, in quanto i NetCon comunicano solo l’avvenimento di un evento. 8.2 Schema generale del modello per la plasticità sinaptica Lo schema generale del modello della plasticità sinaptica è come in figura 8.1. Iniziando dalla sezione presinaptica, il segnale proveniente dalle fibre muscoidi che arriva al terminale presinaptico scattena il rilascio di neurotrasmettitore, come visto nel capitolo 7. Il glutamato si sposta verso il terminale postsinaptico per incontrare i recettori. Una componente diretta arriva al recettore AMPA che scatena una risposta rapida e quindi, la generazione di un EPSC acuto. Un’altra componente del glutamato rilasciato si diffonde nella fessura sinaptica, che incontrerà i recettori NMDA. Questi recettori, come visto, generano una componente a lunga durata nel EPSC e permettono l’ingresso di Ca2+ nella cellula. I potenziali postsinaptici, sotto certe condizioni, possono scattenare la generazione di AP, che attivano i canalli di calcio HVCC, che permettono un’ulteriore ingresso di Ca2+ . La quantità di Ca2+ presente all’interno della cellula viene controllato dalla presenza di una riserva di Ca2+ , che tenta di mantenere il Ca2+ ad una certa concentrazione. Il Ca2+ all’interno della cellula controlla diversi meccanismi legati alla plasticità. Per primo, l’attivazione dell’enzima NO synthase dipende da questo. Questa enzima inizia le reazioni che portano alla produzione di ossido nitrico che fa di messagero retrogrado, generando una forma di potenziamento presinaptico a lungo termine. Altra funzione del calcio interno è il controllo della plasticità legata alla fosforilazione e la rimozione dei recettori AMPA, mediando in questo modo la plasticità bidirezionale legata al recettore NMDA che si osserva negli esperimenti. 8.3 Distribuzione delle conduttanze I valori delle conduttanze e la distribuzione dei meccanismi per i canali ionici sono stati trovati mediante un processo di ottimizzazione in maniera automatica, partendo dai valori riportati in D’Angelo et al. 2001[6] per un modello monocompartimentale. Alcune decisioni sono state presse per eseguire questo calcolo automatico. Per primo, è stato deciso di avere canali Na+ e KV solo nel hillock e l’assone come in Marban et al. 1998[25], mentre meccanismi per il buffer e correnti di Ca2+ esistono solo nel soma e i dendriti, con un vincolo che la concentrazione di Ca2+ sia maggiore nei dendriti rispetto all’assone durante lo stimolo, come indicato in Gall et al. 2005[10]. 92 Figura 8.1: In alto: schema delle relazioni tra i diversi meccanismi nel modello della plasticità sinaptica. In basso: modello completo dei fenomeni sinaptici. Fonte: D’Angelo E., Prestori I., Mapelli L., in preparation. 93 Dopo il processo di ottimizzazione, in maniera manuale sono stati rimossi dei meccanismi ionici che diano correnti molto piccole rispetto ad altre (il criterio è stato un contributo minore al 0.5% della corrente totale in una sezione). Questa rimozione dovrebbe rendere più veloce la simulazione senza alterare notevolmente le dinamiche visto che non vengono svolti calcoli per meccanismi non esistenti nelle diverse sezioni. Gli altri meccanismi sono stati inizialmente posizionati in modo di avere una distribuzione uniforme delle conduttanze in tutti i compartimenti, ma dopo l’ottimizzazione i canali KM , KIR e KA si sono concentrati nel soma, mentre il canale KCa si è spostato nei compartimenti dendritici distali. Ulteriori modifiche manuali sono state fatte nelle conduttanze dei recettori e i canali ionici nei dendriti, in quanto l’ottimizzazione è stata fatta usando un’iniezione di corrente usando come funzione bersaglio una combinazione del potenziale a riposo della cellula, la tensione di soglia e la frequenza degli impulsi di fronte a correnti di 8, 10 e 15pA nel soma. Rispetto ai valori originali delle conduttanze dei recettori AMPA e NMDA in Nieus et al. 2006[27] sono state modificate di un fattore 0.5 e 2.7 rispettivamente. I canali HVCA nei dendriti sono stati regolati in modo da avere una variazione della concentrazione del calcio interno nel compartimento di 1.01.5µM, mentre i canali KCA sono stati aggiustati in accordo a questo cambiamento, in quanto questo canale di potassio risponde in maniera opposta al potenziale generato dall’aumento di calcio e un valore troppo alto della conduttanza avrebbe impedito la generazione corretta di un EPSP. 8.4 Simulazione della risposta postsinaptica di fronte ad un stimolo presinaptico Nella sperimentazione diversi protocolli di stimoli si usano a seconda del fenomeno che si vuole studiare. Per la maggior parte di questo lavoro tre protocolli sono stati utilizzati: • TBS: theta burst spiking • HF: High frequency • LF: Low frequency Il primo consiste in una piccola raffica ad alta frequenza (3 a 10 AP a 100Hz) con una frequenza delle raffiche di circa 10Hz. Il secondo consiste in una lunga raffica di 100Hz, di solito lunga 1 secondo, mentre la terza è un’attività presinaptica persistente a bassa frequenza, di 10Hz o meno. Plasticità nel terminale postsinaptico In figura 8.2 si possono vedere la risposta di fronte ai tre tipi di stimolo quando questo viene applicato ad una sola sinapsi. Nel caso dello stimolo 94 Figura 8.2: Simulazione della risposta della cellula di fronte ai tre protocolli presinaptici: TBS, HF, LF. TBS, il granulo non raggiunge la soglia per generare AP fino la terza raffica. Questo accade per via del recettore NMDA, in quanto questo viene attivato dal glutammato diffuso e questo con in tempo si accumula. Anche se esiste un intervallo di riposo per la rigenerazione delle vescicole nella parte presinaptica, questo non è abbastanza per sopraffare la depressione a breve termine del glutammato rilasciato (la costante di tempo è di 35ms). Questo ritarda la generazione di un secondo AP. Al centro in figura 8.2 c’è la risposta ad uno stimolo di alta frequenza. Il fatto che lo stimolo sia continuo permette la sommazione temporale degli EPSP fino generare un AP. Andando avanti con il tempo si può osservare una riduzione del tempo trascorso tra ogni AP, il che indica un aumento dell’ampiezza degli EPSP, prodotto in questo caso dal potenziamento del recettore AMPA. In fine, lo stimolo di una sola sinapsi a bassa frequenza non genera AP, ma si può comunque osservare l’aumento degli EPSP dovuto sempre all’accumulo di glutammato che attiva, al meno parzialmente, il recettore NMDA. I parametri per la dinamica presinaptica non prevedono una frequenza di risonanza, come in figura 7.2 (pagina 66), ma solo una depressione con l’aumento della frequenza (vedere anche figura 7.3 per il protocollo TBS). In più, anche il recettore AMPA prevede una desensibilizzazione in funzione all’attività. Questo porta complessivamente ad una depressione negli EPSC generati dal recettore AMPA, como si può osservare in figura 8.3. Anche il 95 Figura 8.3: EPSC generati per i protocolli TBS e HF. Figura 8.4: Accumulo di glutammato diffuso per i protocolli TBS e LF. 96 Figura 8.5: Aumento dell’ampiezza degli EPSC per uno stimolo TBS con raffiche di 10 impulsi ogni 250ms. modello del recettore NMDA prevede un meccanismo di desensibilizzazione, ma la bassa probabilità di apertura dei recettori impedisce un notevole accumulo di questo stato, al contrario di quanto accade per il recettore AMPA. Usando un protocollo TBS di raffiche di 10 impulsi a 100Hz con 150ms tra ogni raffica, il potenziamento del EPSC del recettore AMPA diventa più evidente (figura 8.5). Questo si deve al meccanismo implementato in sezione 7.5 per la plasticità a lungo termine. Il tempo più lungo tra le raffiche permette il recupero del glutammato nelle vescicole e lo spostamento dello stato desensibilizzato del recettore AMPA, annullando gli effetti della depressione a breve termine tra ogni raffica. In questo modo rimane solo l’effetto di potenziamento generato dall’accumulo di Ca2+ intracellulare che causa cambiamenti a lungo termine nelle sinapsi. Un profilo di questo cambiamento è nella figura 8.6 per i tre tipi di stimolo. Mentre i primi due causano un potenziamento a lungo termine, il terzo genera una depressione, dovuta al basso livello di Ca2+ introdotto. Questo periodo di depressione seguito da un potenziamento, come si osserva per gli stimoli TBS e HF, è in linea con quanto riportato in Gall et al. 2005[10] e mette in evidenza la dipendenza della plasticità dal Ca2+ e dell’attività della cellula. Per raffiche brevi o per un intervallo di tempo breve (minore di un secondo), il Ca2+ si accumula attivando i meccanismi che causano cambiamenti plastici prima depressivi, in quanto ha una soglia di attivazione minore. Posteriormente, con la durata dell’attività, si raggiunge il LTP. 97 Figura 8.6: Variazione dell’efficacia sinaptica nel tempo. Plasticità nel terminale presinaptico Il terminale presinaptico ha un tipo di plasticità dipendente dall’attività presinaptica e questo lavoro prevede anche il potenziamento per via dell’attività postsinaptica. In figura 8.7 si può osservare la dinamica degli stati presinaptici all’arrivo di uno stimolo TBS generato dalla fibra muscoide. Durante i treni è evidente la depressione nel neurotrasmettitore rilasciato (stato Y) dovuto al lento recupero delle risorse nello stato Z. Comunque il primo impulso di ogni treno presenta un potenziamento progressivo dovuto all’aumento nella probabilità di rilascio P. Questa probabilità è governata dall’attività presinaptica per brevi periodi di tempo. Il mantenimento di questo potenziamento a lungo termine invece è dovuto all’attività postsinaptica, grazie alla produzione di ossido nitrico NO (vedere sezione 7.4). Il modello di produzione prevede anche la dispersione del NO prodotto, che seguendo i dati riportati in Maffei et al. 2003[22], ha un tempo di decadimento del NO di 3.6±1.2s. Questo porta il sistema ad uno stato stazionario dove la quantità prodotta bilancia quella dispersa. Il NO ha delle dinamiche molto particolari. Grazie ai vari passaggi intermedi dall’attivazione del NOS, fino la dissociazione del NO dalla enzima, il NO non viene rilasciato immediatamente, ma ha un piccolo ritardo dell’ordine delle decine di millisecondi. In più, il lungo tempo di vita dello stato legato FeII · NO permette il continuo rilascio di NO in quantità molto piccole ma costante e per un periodo di tempo molto lungo. E’ interessante osservare come anche questo tipo di potenziamento è dovuto al flusso di Ca2+ all’interno della cellula. Il Ca2+ sembra giocare un 98 Figura 8.7: Stati del meccanismo di rilascio di trasmettitore. In ordine dall’alto verso il basso: probabilità di rilascio P, Trasmettitore disponibile X, trasmettitore rilasciato Y, trasmettitore ricuperato Z. Figura 8.8: Produzione di ossido nitrico. 99 ruolo molto importante nella plasticità sinaptica. STDP Il STDP è un tipo di plasticità dipendente dalla differenza di tempo tra lo stimolo presinaptico e l’attivazione della cellula, avendosi un potenziamento quando c’è una relazione di tipo causale, cioè quando lo stimolo presinaptico arriva prima del AP postsinaptico. Invece si ha una depressione nel caso contrario. Questo tipo di plasticità non è stato specificamente incluso nel modello, ma ci si aspetta fosse una conseguenza della plasticità dovuta all’ingresso di calcio nel recettore NMDA, al meno per quanto riguarda il potenziamento per un segnale causale. Infatti, grazie alla dinamica lenta del recettore NMDA, questo raggiunge un massimo dello stato aperto dopo alcuni millisecondi se la membrana è depolarizzata grazie alla rimozione del blocco di Mg2+ , permettendo un considerevole passaggio di corrente dal recettore. Invece se lo stimolo arriva dopo la depolarizzazione, il recettore rimane bloccato in quanto lo stimolo presinaptico arriva durante il periodo refrattario e il passaggio di Ca2+ è minimo, come in figura 7.13. Il protocollo usato nella simulazione e lo stimolo con una corrente nel soma usando una corrente di 55pA durante 2ms e frequenza 10Hz. Questa frequenza non dovrebbe generare un potenziamento spurio ne una depressione. A questo viene accoppiato uno stimolo presinaptico di un solo impulso con una differenza di tempo tra lo stimolo e l’iniezione di corrente nell’intervallo [±45ms]. Questo si ripete per 60 impulsi (equivalenti a poco più di 6 secondi di simulazione). Il risultato è in figura 8.9. Per questo modello di cellula si ha un massimo potenziamento quando c’è una differenza di circa 8ms tra lo stimolo presinaptico e l’iniezione di corrente, mentre quasi subito c’è una depressione per uno stimolo in ritardo. I valori massimi e minimi della variazione degli EPSP sono fortemente dipendenti del modello di plasticità a lungo termine (vedere figura 7.11). Per ∆t positivi sembra ci sia un potenziamento, ma questo è dovuto a che il EPSC del recettore NMDA ha una durata molto lunga, andando ad interferire con l’iniezione di corrente successiva. In effetti, la funzione che descrive la plasticità usando questo protocollo dovrebbe essere una funzione periodica con periodo di 100ms. Altri test sono stati fatti usando una frequenza diversa di 10Hz per il protocollo di accoppiamento. Il risultato è che per alte frequenze prevale il potenziamento a lungo termine. Abbassando la frequenza del protocollo invece si ha un effetto particolare: una depressione ovunque tranne che durante un piccolo intervallo durante la fase positiva. La fase in questo caso è una descrizione migliore, in quanto le simulazioni a diverse frequenze hanno un tempo diverso di simulazione per tenere in conto la periodicità del protocolo. La fase invece è invariante tra tutte le simulazioni e viene descrita come φ = 2π∆tf 100 Figura 8.9: Simulazione della curva di guadagno per il protocolo di accoppiamento per la STDP a 10Hz in funzione della fase tra il segnale presinaptico e lo stimolo nel soma. 101 Figura 8.10: Comparazione di simulazioni del STDP a differente frequenza del protocollo di accoppiamento rispetto alla fase tra il segnale presinaptico e lo stimolo postsinaptico. Per via della lunga durata della corrente del recettore NMDA, ad alte frequenze le fasi si confondono tra di loro, generando un aliasing. 8.5 Discussione e conclusioni Il risultato principale di questo lavoro di simulazione è l’implementazione di un modello matematico che descrive i modelli già conosciuti di plasticità a breve e lungo termine e il loro collegamento alle dinamiche del calcio. In effetti, i parametri che controllano la plasticità sono il calcio, per i meccanismi di plasticità bidirezionale; e l’ossido nitrico (e questo a sua volta viene controllato dalla presenza del calcio) che genera una forma di potenziamento a lungo termine presinaptico per via di un incremento nella probabilità di rilascio di neurotrasmettitore. Il modello, anche se semplificato, descrive in più il fenomeno del STDP e il cambiamento di questo tipo di plasticità quando la frequenza del protocollo d’induzione viene aumentato. Viene data una descrizione del fenomeno che accade a basse frequenze per il protocollo d’induzione del STDP, ma questo resta come un risultato da confrontare con gli sperimenti che sono attualmente in corso. Un’altro risultato è la produzione di un modello semplice per il meccanismo di plasticità bidirezionale 102 Figura 8.11: In alto: Dipendenza della plasticità sinaptica dal calcio. Fonte: D’Angelo E., Prestori i, Mapelli L., in preparation. Data from D’Errico et al, 2009 Gall et al., 2005. In basso: simulazione della plasticità in funzione del numero di spikes (rappresentato come il tempo per un segnale di 100Hz) con sovraposta la linea di massimo e minimo del potenziamento per il STDP con livelli simili di calcio. La discrepanza tra il modello e le osservazioni (in alto) potrebbe essere dovuta a la mancanza dei recettori metabotropici mGluR. 103 dipendente dal calcio. Usando i dati in Gall et al 2005[10] e D’Errico et al 2009[9] si è prodotto un modello di plasticità che sembra dipendere da due fenomeni separati ma sovrapposti (vedere figura 7.11). In figura 8.11 si può osservare come è, nella realtà, la relazione tra la plasticità e il calcio intracellulare, descritto mediante la luminosità, con una linea sovrapposta che rappresenta i massimi e minimi del STDP in corrispondenza a livelli di luminosità simili. Nella figura di sotto c’è la simulazione del modello, in funzione all numero di spikes per un’attività presinaptica di 100Hz. Anche se sembra esserci un’alta correlazione tra la curva plasticitàcalcio, la posizione dei limiti del STDP sono molto differenti rispetto alla realtà. Questa discrepanza potrebbe essere dovuta alla mancata implementazione dei recettori metabotropici, che sono coinvolti ulteriormente nelle dinamiche del calcio intracellulare. In effetti, i limiti per il STDP sembrano essere simili ai valori di plasticità bidirezionale, indicando che questa gioca un ruolo molto importante nella generazione del STDP. A meno di questa discrepanza, un semplice modello riesce comunque a riprodurre i fenomeni di plasticità sinaptica indotti dai segnali presinaptici bastati nella loro durata, frequenza e fase. Un’ulteriore tunning dei parametri è necessario. Future modifiche che potrebbero essere proposte per questo modello sono l’inclusione dei recettori metabotropici, un modello più dettagliato per i meccanismi di plasticità bidirezionale dipendenti dal calcio, per i meccanismi postsinaptici della plasticità, e un modello dettagliato per la produzione cGMP a partire da GTP dovuta all’attivazione di sGC in presenza di NO, per quanto riguardano i fenomeni di plasticità presinaptica. Altra idea sarebbe la ricerca dei limiti per i valori dei parametri del modello, in modo da poter fare una simulazione che tenga conto delle diverse incertezze e la produzione di una simulazione di fronte a un segnale stocastico proveniente dalle fibre afferenti. 104 Appendices 105 Appendice A Proprietà non sinaptiche della cellula Durante lo sviluppo di questo modello, molti esperimenti sono stati fatti per capire il ruolo dei diversi componenti della cellula, e in particolare il ruolo dei diversi canali ionici. Dopo la fase di ottimizzazione per i valori delle conduttanze è stato esseguito un “fine tunning” di questi valori in modo manuale, per avere le caratteristiche necessarie della risposta sinaptica. A.1 Canali ionici In figura A.1 ci sono le correnti dei diversi canali di potassio trovati nel soma, hillock e assone per uno stimolo TBS. I canali di potassio solitamente sono repolarizzanti, cioè diminuiscono il potenziale elettrico della membrana. Canali KV Il canale KV viene posizionato nel hillock e nell’assone e la sua funzione è quella di repolarizzare la membrana dopo la generazione di un AP in modo molto simile a quello del modello di Hodgkin-Huxley. Canali KM Questo canale ha delle dinamiche molto lente (in diversi articoli viene chiamato anche Kslow ). Dopo un AP mantiene per un periodo di tempo relativamente lungo il suo stato aperto, permettendo il passaggio di una corrente di potassio che iperpolarizza la cellula. Questa corrente non è molto alta, ma è abbastanza da inibire la generazione di successivi AP, ad esempio, opponendosi al EPSP persistente del recettore NMDA. Quindi una accurata regolazione di questo canale è necessaria se si vuole che la cellula risponda con delle raffiche o meno. 107 Figura A.1: Correnti ioniche di potassio nel soma (nel hillock e assone per i canali KV). 108 Figura A.2: Correnti ioniche per il canale di potassio controllato dal calcio e quello di calcio controllato dalla tensione della membrana. Canali KA I canali di potassio tipo A non hanno una corrente notevole. Sembra comunque giocare un ruolo nella plasticità a breve termine e la generazione di AP per successive raffiche. Anche se non mostrato in figura, questo canale perde efficacia con stimoli successivi, generando una sorta di potenziamento per via della mancanza di depressione dovuta al potassio. Quindi ha un ruolo indiretto nella riduzione del delay degli AP successivi. Canali KIR I canali KIR, come si può vedere in figura, hanno sempre una corrente persistente. Questa corrente è importante nel stabilire il potenziale di riposo della cellula. Una maggiore conduttanza significa una cellula iperpolarizzata. Comunque, al contrario degli altri canali, durante gli AP la corrente di questo canale si riduce, il che in modo indiretto genera un potenziamento a breve termine (pochi millisecondi) o meglio, depolarizza la membrana se altri canali sono attivi. Canali KCA e VGCC Questi due canali sono sotto certi aspetti complementari. La depolarizzazione della membrana provoca l’apertura del canale di Ca2+ controllato dalla tensione della membrana VGCC, permettendo l’ingresso di ioni di Ca2+ e questi, aumentando al concentrazione di Ca2+ intracellulare, provocano 109 Figura A.3: Effetti di diverse conduttanze dei canali KCA nel potenziale della membrana. A sinistra: mancanza di canali KCA nei dendriti. A destra: eccesso di canali KCA nei dendriti. l’apertura dei canali di potassio dipendenti dal Ca2+ KCA. La depolarizzazione prodotta dall’ingresso di ioni di Ca2+ viene ridotta dalla fuoriuscita di ioni K+ . L’equilibrio delle conduttanze di questi due canali è critica per il funzionamento dei dendriti, dove in effetti sono concentrati questi canali. Un eccesso di conduttanza per i canali KCA rispetto a quelli VGCC impedirebbe la generazione corretta di potenziali postsinaptici, mentre una carenza impedirebbe la repolarizzazione della membrana nei dendriti, generando un gradiente di potenziale tra i compartimenti rendendo impossibile la successiva generazione di AP (vedere figura A.3) Canali NA Non c’è veramente molto da dire riguardo questi canali. Il comportamento è molto simile ai canali di sodio nel modello di Hodgkin-Huxley. A differenza di altri modelli, le tre unità di canali Na+ (NAT , NAR e NAP ) sono stati messi insieme in un solo meccanismo come in Magistretti et al. (2006)[23]. Come indicato nel lavoro di Diwakar et al. (2009)[7], il rapporto tra i canali Na+ tra il hillock e l’assone è stato vincolato durante l’ottimizzazione ad essere di un 50%. Questo significa avere una densità dei canali, e quindi una conduttanza per unità di superficie, maggiore nel hillock. E questo significa che gli AP vengono generati proprio nel hillock. A.2 Risposta della cellula a stimoli contemporanei Durante la fase di ottimizzazione manuale, particolare attenzione è stata 110 Figura A.4: Risposta della cellula quando vengono stimolati contemporaneamente uno o più dendriti. fata nel replicare un risultato esperimentale riportato in D’Angelo et al. (1995)[5]: durante lo stimolo di uno o due dendriti non c’è stato una generazione di AP, ma lo stimolo di due dendriti genera un EPSP con decadimento più lento grazie al contributo dei recettori NMDA. Tre dendriti stimolati contemporaneamente sono necessari per generare un AP partendo dal potenziale di riposo, mentre quattro dendriti stimolati generano un secondo AP. Stimoli continui generano una risposta a raffica nella cellula. 111 112 Bibliografia [1] S. Armano, P. Rossi, V. Taglietti, and E. D’Angelo. Long-term potentiation of intrinsic excitability at the mossy fiber-granule cell synapse of rat cerebellum. J. Neurosci., 20(14):5208–5216, Jul 2000. [2] R. Bardoni and O. Belluzzi. Kinetic study and numerical reconstruction of A-type current in granule cells of rat cerebellar slices. J. Neurophysiol., 69(6):2222–2231, Jun 1993. [3] S. G. Brickley, S. G. Cull-Candy, and M. Farrant. Development of a tonic form of synaptic inhibition in rat cerebellar granule cells resulting from persistent activation of GABAA receptors. J. Physiol. (Lond.), 497 ( Pt 3):753–759, Dec 1996. [4] Nicholas T Carnevale and Michael L Hines. Cambridge University Press, 2006. The NEURON book. [5] E. D’Angelo, G. De Filippi, P. Rossi, and V. Taglietti. Synaptic excitation of individual rat cerebellar granule cells in situ: evidence for the role of NMDA receptors. J. Physiol. (Lond.), 484 ( Pt 2):397–413, Apr 1995. [6] E. D’Angelo, T. Nieus, A. Maffei, S. Armano, P. Rossi, V. Taglietti, A. Fontana, and G. Naldi. Theta-frequency bursting and resonance in cerebellar granule cells: experimental evidence and modeling of a slow k+-dependent mechanism. J. Neurosci., 21(3):759–770, Feb 2001. [7] S. Diwakar, J. Magistretti, M. Goldfarb, G. Naldi, and E. D’Angelo. Axonal Na+ channels ensure fast spike activation and back-propagation in cerebellar granule cells. J. Neurophysiol., 101(2):519–532, Feb 2009. [8] Jürg Hutter Dominik Marx. Ab initio molecular dynamics: basic theory and advanced methods. Cambridge University Press, 1 edition, 2009. [9] Anna D’Errico, Francesca Prestori, and Egidio D’Angelo. Differential induction of bidirectional long-term changes in neurotransmitter release by frequency-coded patterns at the cerebellar input. The Journal of physiology, 587(24):5843–5857, 2009. 113 [10] D. Gall, F. Prestori, E. Sola, A. D’Errico, C. Roussel, L. Forti, P. Rossi, and E. D’Angelo. Intracellular calcium regulation by burst discharge determines bidirectional long-term synaptic plasticity at the cerebellum input stage. J. Neurosci., 25(19):4813–4822, May 2005. [11] Charmaine Griffiths, Victoria Wykes, Tomas C Bellamy, and John Garthwaite. A new and simple method for delivering clamped nitric oxide concentrations in the physiological range: application to activation of guanylyl cyclase-coupled nitric oxide receptors. Molecular pharmacology, 64(6):1349–1356, 2003. [12] WU Guoyao and Sidney M Morris. Arginine metabolism: nitric oxide and beyond. Biochemical Journal, 336(1):1–17, 1998. [13] Y. Gutfreund, Y. yarom, and I. Segev. Subthreshold oscillations and resonant frequency in guinea-pig cortical neurons: physiology and modelling. J. Physiol. (Lond.), 483 ( Pt 3):621–640, Mar 1995. [14] József Hámori, Robert L Jakab, and József Takács. Morphogenetic plasticity of neuronal elements in cerebellar glomeruli during deafferentation-induced synaptic reorganization. Neural Plasticity, 6(1):11–20, 1997. [15] Mohammad Mahfuzul Haque, Jesús Tejero, Mekki Bayachou, ZhiQiang Wang, Mohammed Fadlalla, and Dennis J Stuehr. Thermodynamic characterization of five key kinetic parameters that define neuronal nitric oxide synthase catalysis. FEBS Journal, 280(18):4439–4453, 2013. [16] Alan C. Hindmarsh. Lsode and lsodi, two new initial value ordinary differential equation solvers. SIGNUM Newsl., 15(4):10–11, December 1980. [17] A. L. Hodgkin and A. F. Huxley. A quantitative description of membrane current and its application to conduction and excitation in nerve. 1952. Bull. Math. Biol., 52(1-2):25–71, 1990. [18] R. L. Jakab and J. Hamori. Quantitative morphology and synaptology of cerebellar glomeruli in the rat. Anat. Embryol., 179(1):81–88, 1988. [19] E. G. Jones and S. Ramon y Cajal. Santiago Ramón y Cajal and the Croonian Lecture, March 1894. Trends Neurosci., 17(5):190–192, May 1994. [20] E. R. Kandel. The molecular biology of memory storage: a dialog between genes and synapses. Biosci. Rep., 21(5):565–611, Oct 2001. [21] Bernard Katz. The release of neural transmitter substances, volume 10. Liverpool University Press, 1969. 114 [22] Arianna Maffei, Francesca Prestori, Katsuei Shibuki, Paola Rossi, Vanni Taglietti, and Egidio D’Angelo. No enhances presynaptic currents during cerebellar mossy fiber—granule cell ltp. Journal of neurophysiology, 90(4):2478–2483, 2003. [23] J. Magistretti, L. Castelli, L. Forti, and E. D’Angelo. Kinetic and functional analysis of transient, persistent and resurgent sodium currents in rat cerebellar granule cells in situ: an electrophysiological and modelling study. J. Physiol. (Lond.), 573(Pt 1):83–106, May 2006. [24] Peter L Malen and Paul F Chapman. Nitric oxide facilitates longterm potentiation, but not long-term depression. The Journal of neuroscience, 17(7):2645–2651, 1997. [25] Eduardo Marban, Toshio Yamagishi, and Gordon F Tomaselli. Structure and function of voltage-gated sodium channels. The Journal of Physiology, 508(3):647–657, 1998. [26] R. G. Morris and D. O. Hebb. D.O. Hebb: The Organization of Behavior, Wiley: New York; 1949. Brain Res. Bull., 50(5-6):437, 1999. [27] T. Nieus, E. Sola, J. Mapelli, E. Saftenku, P. Rossi, and E. D’Angelo. LTP regulates burst initiation and frequency at mossy fiber-granule cell synapses of rat cerebellum: experimental observations and theoretical predictions. J. Neurophysiol., 95(2):686–699, Feb 2006. [28] Sanford L Palay and Victoria Chan-Palay. Cerebellar cortex: cytology and organization. Springer Science & Business Media, 2012. [29] J. R. Pugh and I. M. Raman. GABAA receptor kinetics in the cerebellar nuclei: evidence for detection of transmitter from distant release sites. Biophys. J., 88(3):1740–1754, Mar 2005. [30] I. M. Raman and B. P. Bean. Inactivation and recovery of sodium currents in cerebellar Purkinje neurons: evidence for two mechanisms. Biophys. J., 80(2):729–737, Feb 2001. [31] C. Rosenmund, A. Feltz, and G. L. Westbrook. Synaptic NMDA receptor channels have a low open probability. J. Neurosci., 15(4):2788–2795, Apr 1995. [32] Brijesh Roy, Edward J Halvey, and John Garthwaite. An enzyme-linked receptor mechanism for nitric oxide-activated guanylyl cyclase. Journal of Biological Chemistry, 283(27):18841–18851, 2008. [33] E. Sola, F. Prestori, P. Rossi, V. Taglietti, and E. D’Angelo. Increased neurotransmitter release during long-term potentiation at mossy fibregranule cell synapses in rat cerebellum. J. Physiol. (Lond.), 557(Pt 3):843–861, Jun 2004. 115 [34] T. Takeuchi, A. J. Duszkiewicz, and R. G. Morris. The synaptic plasticity and memory hypothesis: encoding, storage and persistence. Philos. Trans. R. Soc. Lond., B, Biol. Sci., 369(1633):20130288, Jan 2014. [35] M. V. Tsodyks and H. Markram. The neural code between neocortical pyramidal neurons depends on neurotransmitter release probability. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 94(2):719–723, Jan 1997. [36] R. S. Zucker and W. G. Regehr. Short-term synaptic plasticity. Annu. Rev. Physiol., 64:355–405, 2002. 116