TECNICHE MOLECOLARI Poiché la fine del 1950 e primi anni 1960, i biologi molecolari hanno imparato a caratterizzare, isolare e manipolare le componenti molecolari delle cellule e organismi. Questi componenti includono il DNA, il repository di informazioni genetiche; RNA, un parente stretto del DNA, le cui funzioni vanno da servire come una copia temporanea di lavoro di DNA alle effettive funzioni strutturali ed enzimatiche così come una parte funzionale e strutturale dell'apparato traslazionale, e proteine, il tipo strutturale importante e enzimatica della molecola nelle cellule. Espressione clonazione Una delle tecniche più basilari della biologia molecolare per lo studio della funzione delle proteine è la clonazione di espressione. In questa tecnica, il DNA che codifica per una proteina di interesse viene clonato (usando la PCR e / o gli enzimi di restrizione) in un plasmide (noto come un vettore di espressione). Questo plasmide può avere elementi del promotore speciale per guidare la produzione della proteina di interesse, e può anche avere marcatori di resistenza agli antibiotici per seguire il plasmide. Questo plasmide può essere inserito in nessuna delle due cellule batteriche o animali. Introduzione di DNA in cellule batteriche può essere effettuata mediante la trasformazione (tramite assunzione di DNA nudo), coniugazione (tramite contatto cellula-cellula) o trasduzione (tramite vettore virale). Introduzione di DNA in cellule eucariotiche, come le cellule animali, con mezzi fisici o chimici si chiama trasfezione. Diverse tecniche di transfezione differenti sono disponibili, come la transfezione di calcio fosfato, elettroporazione, microiniezione e transfezione liposoma. DNA può anche essere introdotto nelle cellule eucariotiche con virus o batteri come vettori, la seconda è a volte chiamata bactofection e in usi particolari Agrobacterium tumefaciens. Il plasmide può essere integrato nel genoma, con un conseguente transfezione stabile, o può rimanere indipendenti del genoma, chiamata trasfezione transiente. In entrambi i casi, il DNA che codifica per una proteina di interesse è ora all'interno di una cella, e la proteina può ora essere espresso. Una varietà di sistemi, come promotori inducibili e specifici fattori di segnalazione cellulare, sono a disposizione per contribuire a esprimere la proteina d'interesse a livelli elevati. Grandi quantità di una proteina può quindi essere estratto dalle cellule batteriche o eucariotiche. La proteina può essere sottoposto alla prova dell'attività enzimatica sotto una varietà di situazioni, la proteina può essere cristallizzata così la sua struttura terziaria può essere studiata, o, in industria farmaceutica, l'attività di nuovi farmaci contro la proteina può essere studiato. Reazione a catena della polimerasi (PCR) La reazione a catena della polimerasi è una tecnica estremamente versatile per la copiatura del DNA. In breve, la PCR permette una singola sequenza di DNA da copiare (milioni di volte), o alterate in modo predeterminato. Ad esempio, la PCR può essere utilizzata per introdurre i luoghi degli enzimi di restrizione, o di mutare (cambiare) basi di DNA particolare, quest'ultimo è un metodo denominato "cambio rapido". La PCR può anche essere usato per determinare se un particolare frammento di DNA si trova in una libreria di cDNA. PCR ha molte varianti, come la PCR di trascrizione inversa (RT-PCR) per l'amplificazione di RNA, e, più recentemente, realtime PCR (QPCR) che consentono la misurazione quantitativa di molecole di DNA o RNA. Gel elettroforesi elettroforesi su gel è uno degli strumenti principali della biologia molecolare. Il principio di base è che il DNA, RNA e proteine possono essere separate per mezzo di un campo elettrico. In gel elettroforesi, DNA e RNA possono essere separati in base a dimensione, eseguendo il DNA attraverso un gel. Le proteine possono essere separate in base alle dimensioni utilizzando un gel SDS-PAGE, o sulla base della dimensione e della loro carica elettrica, utilizzando ciò che è conosciuto come un elettroforesi su gel 2D. Macromolecola blotting e sondaggio I termini''''settentrionale, occidentale''''e''orientali''blotting sono derivati da quello che inizialmente era uno scherzo della biologia molecolare che ha giocato sul termine''''Southern blotting, dopo che la tecnica descritta da Edwin Southern per l'ibridazione del DNA cancellati. Patricia Thomas, sviluppatore della macchia RNA che poi divenne nota come la''macchia''del nord in realtà non ha usato il termine. Altre combinazioni di queste tecniche prodotte termini come southwesterns''''(ibridazioni proteina-DNA),''''northwesterns (per rilevare le interazioni proteina-RNA) e farwesterns''''(interazioni proteina-proteina), ognuno dei quali sono attualmente in letteratura. Southern blotting Prende il nome dal suo inventore, biologo Edwin Southern, la macchia del sud è un metodo per il rilevamento della presenza di una specifica sequenza di DNA in un campione di DNA. campioni di DNA, prima o dopo enzimi di restrizione sono separati mediante elettroforesi su gel e poi trasferito su una membrana tamponando con un'azione capillare. La membrana è quindi esposto ad una sonda di DNA marcato che ha un complemento sequenza base alla sequenza del DNA di interesse. La maggior parte dei protocolli originali utilizzati etichette radioattivi, le alternative comunque non radioattivo sono ora disponibili. Southern blotting è meno comunemente usato in laboratorio scientifico grazie alla capacità di altre tecniche, come la PCR, per individuare specifiche sequenze di DNA da campioni di DNA. Queste macchie sono ancora utilizzati per alcune applicazioni, tuttavia, come la misurazione numero transgene copia in topi transgenici, o nella progettazione di linee di staminali embrionali gene cellule knockout. Northern blotting Il Northern blot viene utilizzato per studiare il pattern di espressione di un particolare tipo di molecola di RNA come confronto relativo tra un insieme di diversi campioni di RNA. Si tratta essenzialmente di una combinazione di denaturazione elettroforesi su gel di RNA, e una macchia. In questo processo l'RNA è separato in base alle dimensioni e viene poi trasferito su una membrana che viene sondato con una etichetta complemento di una sequenza di interesse. I risultati possono essere visualizzati attraverso una varietà di modi a seconda dell'etichetta utilizzata, tuttavia, la maggior parte comportare la rivelazione di bande che rappresentano le dimensioni del RNA rilevati nel campione. L'intensità di queste bande è legato alla quantità di RNA bersaglio nei campioni analizzati. La procedura è comunemente usato per studiare quando e quanto espressione genica si verifica misurando la quantità di RNA che è presente in diversi campioni. E 'uno degli strumenti più elementari per determinare in quale momento, e in quali condizioni, alcuni geni sono espressi nei tessuti viventi. Western blotting Anticorpi anti maggior parte delle proteine possono essere creati iniettando piccole quantità di proteina in un animale come un topo, coniglio, pecora, o un asino (anticorpi policlonali) o prodotti in colture cellulari (anticorpi monoclonali). Questi anticorpi possono essere utilizzati per una varietà di tecniche analitiche e preparative. Nel Western blotting, proteine vengono prima separate da dimensione, in un gel sottile inserito tra due lastre di vetro in una tecnica nota come SDS-PAGE (sodio dodecil solfato poliacrilammide gel elettroforesi). Le proteine nel gel vengono poi trasferiti in un nylon PVDF, nitrocellulosa, o membrana di sostegno. Questa membrana può essere sondato con soluzioni di anticorpi. Gli anticorpi che si legano alla proteina di interesse possono essere visualizzati tramite una varietà di tecniche, compresi i prodotti colorati, chemiluminescenza, o autoradiografia. Spesso, gli anticorpi sono etichettati con un enzimi. Quando un substrato chemiluminescente è esposto l'enzima che permette la rilevazione. Utilizzando tecniche di western blotting permette non solo di analisi quantitativa di rilevamento, ma anche. metodi analoghi a macchiare occidentale può essere usato per colorare direttamente specifiche proteine in cellule vive, o sezioni di tessuto. Tuttavia, questi metodi''immunostaining'', come il pesce, vengono usati più spesso nella ricerca di biologia delle cellule. Eastern blotting Eastern blotting tecnica è quella di rilevare modificazioni post-traduzionali delle proteine. Proteine cancellati al PVDF o membrana di nitrocellulosa sono sondati per le modifiche utilizzando substrati specifici. Matrici Una matrice di DNA è una raccolta di spot attaccato ad un supporto solido come un vetrino da microscopio, dove ogni punto contiene uno o più frammenti a singolo filamento di DNA oligonucleotide. Gli array permettono di mettere giù una grande quantità di molto piccoli (diametro di 100 micrometri) punti in una singola diapositiva. Ogni spot ha una molecola frammento di DNA che è complementare a una singola sequenza di DNA (simile al Southern blotting). Una variante di questa tecnica permette l'espressione genica di un organismo in una fase particolare di sviluppo per essere qualificato (profili di espressione). In questa tecnica l'RNA in un tessuto è isolato e convertito in cDNA marcato. Questo DNA è quindi ibridato ai frammenti sulla matrice e visualizzazione della ibridazione si può fare. Dal momento che array multipli possono essere fatte con la stessa posizione dei frammenti sono particolarmente utile per confrontare l'espressione genica di due tessuti diversi, come un tessuto sano e canceroso. Inoltre, si può misurare ciò che i geni sono espressi e come tale espressione cambia con il tempo o con altri fattori. Per esempio, il lievito comune, la''''Saccharomyces cerevisiae, contiene circa 7000 geni, con un microarray, si può misurare qualitativamente come ogni gene è espresso, e come che cambia espressione, ad esempio, con una variazione di temperatura. Ci sono molti modi per fabbricare microarrays, le più comuni sono i chip di silicio, vetrini da microscopio con i punti di ~ 100 micron di diametro, array custom, e gli array con le più grandi macchie sulle membrane porose (macroarrays). Ci possono essere ovunque da 100 posti a più di 10.000 su un dato array. Gli array possono essere effettuati anche con altre molecole di DNA. Ad esempio, un array di anticorpi possono essere utilizzati per determinare quali proteine o batteri sono presenti in un campione di sangue. Allele oligonucleotidiche specifiche oligonucleotide specifico allele (ASO) è una tecnica che permette la rilevazione di mutazioni singola base senza la necessità di elettroforesi PCR o gel. Breve (20-25 nucleotidi di lunghezza), sonde marcate sono esposti al DNA bersaglio non frammentato. Ibridazione si verifica con elevata specificità a causa della breve lunghezza delle sonde e anche un cambiamento di una singola base ostacolerà ibridazione. Il DNA bersaglio è quindi lavato e sonde marcate che non ibridare vengono rimossi. Il DNA bersaglio è poi analizzato per la presenza della sonda tramite radioattività o di fluorescenza. In questo esperimento, come nella maggior parte delle tecniche di biologia molecolare, un controllo deve essere utilizzato per garantire la sperimentazione di successo. Illumina il test di metilazione è un esempio di un metodo che sfrutta la tecnica di ASO per misurare differenze uno paia di basi in sequenza. Antiquate tecnologie In biologia molecolare, procedure e tecnologie sono in costante sviluppo delle tecnologie e degli anziani abbandonati. Ad esempio, prima dell'avvento di elettroforesi su gel di DNA (agarosio o poliacrilammide), le dimensioni delle molecole del DNA era tipicamente determinato dalla velocità di sedimentazione in gradiente di saccarosio, una tecnica lenta e alta intensità di lavoro che richiedono strumentazione costosa; prima di saccarosio gradienti, viscometria è stato utilizzato . A parte il loro interesse storico, spesso è utile sapere su vecchie tecnologie, come è talvolta utile per risolvere un altro problema nuovo per il quale la tecnica più recente è inappropriato.