ISTRUZIONI PER L'USO TERRENI SU PIASTRA PRONTI ALL'USO PA-254055.06 Rev.: April 2013 BD XLD Agar (Xylose-Lysine-Desoxycholate Agar) USO PREVISTO BD XLD Agar è un terreno differenziale e moderatamente selettivo per l'isolamento e la differenziazione di patogeni enterici Gram-negativi (Salmonella e Shigella) da campioni clinici, particolarmente adatto per l'isolamento di Shigella spp. PRINCIPI E SPIEGAZIONE DELLA PROCEDURA Metodo microbiologico. L'agar XLD è stato allestito da Taylor per facilitare l'isolamento e l'identificazione di patogeni enterici, in particolare la Shigella.1 I patogeni vengono differenziati non solo dai non patogeni fermentanti il lattosio, ma anche da numerosi non patogeni che non fermentano il lattosio o il saccarosio. Il terreno, inoltre, è stato allestito per stimolare la crescita di Shigella,1 che spesso in altri preparati non si sviluppa per la presenza di inibitori tossici. I risultati ottenuti da numerose valutazioni cliniche hanno confermato l'efficacia alquanto elevata dell'agar XLD nell'isolamento primario di Shigella e Salmonella.2-6 L'agar XLD è uno dei terreni usati per i test sui limiti microbici della USP e EP. 9, 10 L'agar XLD è un terreno differenziale e selettivo che utilizza l'estratto di lievito come fonte di nutrienti e vitamine e il desossicolato di sodio come agente selettivo per inibire i microrganismi Gram-positivi. Lo xilosio viene aggiunto al terreno perché è fermentato da praticamente tutti gli enterobatteri ad eccezione delle Shigellae, e ciò consente di differenziare le specie Shigella. La lisina viene aggiunta per differenziare le Salmonellae dai batteri non patogeni: in assenza di lisina, infatti, le Salmonellae fermentano lo xilosio, diventando indistinguibili dalle specie non patogene. Le salmonelle, una volta esaurito lo xilosio, attaccano la lisina per mezzo dell'enzima lisina decarbossilasi, riportando il pH su valori alcalini come nella reazione della Shigella. Per evitare un processo analogo da parte dei coliformi lisina-positivi, vengono aggiunti lattosio e saccarosio per produrre un eccesso di acido.1 Per migliorare la capacità di differenziazione del preparato, si aggiunge un sistema di indicatori di H2S a base di tiosolfato di sodio e citrato di ammonio ferrico che rivela la presenza di solfuro di idrogeno, con conseguente formazione di colonie nere al centro. I produttori non patogeni di H2S non decarbossilano la lisina ma provocano la reazione acida che impedisce l'annerimento delle colonie, riscontrabile solo con pH neutro o alcalino.1 REAGENTI BD XLD Agar Formula* per litro di acqua purificata Xilosio 3,5 g L-lisina 5,0 Lattosio 7,5 Saccarosio 7,5 Cloruro di sodio 5,0 Estratto di lievito 3,0 Rosso fenolo 0,08 Desossicolato di sodio 2,5 Tiosolfato di sodio 6,8 Citrato di ammonio ferrico 0,8 Agar 13,5 pH 7,4 ± 0,2 *Compensata e/o corretta per soddisfare i criteri di rendimento. PA-254055.06 -1- PRECAUZIONI . Solo per uso professionale. Non usare le piastre se presentano tracce di contaminazione microbica, alterazioni di colore, essiccamento, incrinature o altri segni di deterioramento. Per maneggiare i prodotti in condizioni asettiche, riconoscere i rischi biologici e smaltire i prodotti usati, consultare le ISTRUZIONI GENERALI PER L'USO. CONSERVAZIONE E VITA UTILE Alla consegna, conservare le piastre al buio a 2 – 8 °C nella confezione originaria fino a immediatamente prima dell'uso. Evitare congelamento e surriscaldamento. Le piastre possono essere inoculate sino alla data di scadenza (v. l'etichetta sulla confezione) e incubate per i tempi di incubazione raccomandati. Le piastre prelevate dalle confezioni da 10 già aperte possono essere usate per una settimana se conservate in luogo pulito a 2 – 8 °C. CONTROLLO DI QUALITÀ A CURA DELL’UTENTE Inoculare i campioni rappresentativi con i seguenti ceppi (per informazioni più dettagliate v. ISTRUZIONI GENERALI PER L'USO). Incubare le piastre in ambiente aerobico a 35 – 37 °C per 18 – 24 h. Ceppi Risultati della crescita Salmonella Typhimurium ATCC 14028 Crescita da buona a eccellente, colonie rosse, nere al centro Salmonella Abony DSM 4224 Crescita da buona a eccellente, colonie rosse, nere al centro Shigella flexneri ATCC 12022 Crescita da buona a eccellente, colonie rosse Shigella sonnei ATCC 25931 Crescita da buona a eccellente, colonie rosse Enterococcus faecalis ATCC 29212 Inibizione da parziale a completa Escherichia coli ATCC 25922 Inibizione da parziale a completa, colonie da giallo ad arancione Proteus mirabilis ATCC 12453 Crescita; colonie rosa, nere al centro, sciamatura inibita Non inoculate Rosso PROCEDURA Materiali forniti BD XLD Agar (Xylose-Lysine-Desoxycholate Agar) (piastre impilate Stacker 90 mm). Microbiologicamente controllate. Materiali non forniti Terreni di coltura accessori, reagenti e apparecchiature di laboratorio necessarie. Tipi di campioni Terreno differenziale selettivo per l'isolamento di Salmonella e Shigella da campioni fecali o tamponi rettali di pazienti con sospetta infezione enterobatterica o da materiali non clinici (v. anche PERFORMANCE E LIMITAZIONI DELLA PROCEDURA). Procedura del test Strisciare il campione non appena viene consegnato in laboratorio. La piastra strisciata è utilizzata prevalentemente per isolare le colture pure dai campioni contenenti flora mista. In alternativa, se il materiale in coltura proviene direttamente da un tampone, rotolare il tampone su una piccola area del bordo e strisciare da questa zona inoculata. Inoculare anche un terreno meno selettivo, come BD MacConkey II Agar, per agevolare l'isolamento se la popolazione di Gram-negativi è ridotta e fornire indicazioni su altri microrganismi presenti nel campione. PA-254055.06 -2- Incubare le piastre, schermate dalla luce, a 35 ± 2 °C per almeno 18 – 24 h. Possono essere necessarie 48 h di incubazione prima che le colonie su agar XLD raggiungano la piena colorazione. L'agar XLD può essere usato come terreno per le sottocolture del brodo Selenite-F. Risultati La tipica morfologia delle colonie è la seguente: Organismi BD XLD Agar (Xylose-Lysine-Desoxycholate Agar) E. coli Grandi, piatte, gialle. Alcuni ceppi possono essere inibiti. Enterobacter/Klebsiella Mucoidi, gialle. Proteus Da rosse a gialle. Gran parte dei ceppi con zone centrali nere. Salmonella, H2S-positiva Arancioni con zone centrali nere Shigella, Salmonella, H2SRosse negative Pseudomonas Rosse Batteri Gram-positivi Da nessuna crescita a lieve crescita PERFORMANCE E LIMITAZIONI DELLA PROCEDURA BD XLD Agar è usato per l'isolamento di Salmonella e/o Shigella da campioni di feci umane o tamponi rettali ed è particolarmente adatto per l'isolamento di Shigella.7,8 Un solo terreno difficilmente può isolare tutti i patogeni contenuti in un campione. Pertanto, inoculare con il campione altri terreni per isolare Salmonella e/o Shigella ed eventualmente altri patogeni enterici. Alcuni ceppi di Shigella possono richiedere un periodo di incubazione di 42 – 48 h. Benché sia possibile eseguire alcuni test diagnostici direttamente sul terreno, per un'identificazione completa è necessario effettuare test biochimici e, all'occorrenza, immunologici usando colture pure. Consultare le relative voci della bibliografia.3,4,7 BIBLIOGRAFIA 1. Taylor, W.I. 1965. Isolation of shigellae. I. Xylose lysine agars; new media for isolation of enteric pathogens. Am. J. Clin. Pathol., 44:471-475. 2. Taylor, W.I., and B. Harris. 1965. Isolation of shigellae. II. Comparison of plating media and enrichment broths. Am. J. Clin. Pathol. 44:476-479. 3. Taylor, W.I., and B. Harris. 1967. Isolation of shigellae III. Comparison of new and traditional media with stool specimens. Am. J. Clin. Pathol. 48:350-355. 4. Taylor, W.I., and D. Schelhart. 1967. Isolation of shigellae. IV. Comparison of plating media with stools. Am. J. Clin. Pathol. 48:356-362. 5. Taylor, W.I., and D. Schelhart. 1968. Isolation of shigellae. VI. Performance of media with stool specimens. Appl. Microbiol. 16:1387-1393. 6. Pollock, H.M., and B.J. Dahlgren. 1974. Clinical evaluation of enteric media in the primary isolation of Salmonella and Shigella. Appl. Microbiol. 27:197-201. 7. Bopp, C.A., Brenner, F.W., Fields, P.I., Wells, J.G., and N.A. Strockbine. 2003. Escherichia, Shigella, and Salmonella. In: Murray, P. R., E. J. Baron, J.H. Jorgensen, M. A. Pfaller, and R. H. Yolken (ed.). Manual of clinical microbiology, 8th ed. American Society for Microbiology, Washington, D.C. 8. Kist, M., et al. 2000. Infektionen des Darmes. In: Mauch, H., Lüttiken, R., and S. Gatermann (eds.): MiQ - Qualitätsstandards in der mikrobiologisch-infektiologischen Diagnostik, vol. 9. Urban & Fischer, Munich, Germany. 9. U.S. Pharmacopeial Convention, Inc. 2009. The U.S. Pharmacopeia 32/The national formulary 27--2009. U.S. Pharmacopeial Convention, Inc., Rockville, Md. USA 10. Council of Europe, 2008. European Pharmacopoeia, 6.1. European Pharmacopoeia Secretariat. Strasbourg/France PA-254055.06 -3- CONFEZIONE/DISPONIBILITÀ BD XLD Agar N. di cat. 254055 N. di cat. 254090 Terreni su piastra pronti all'uso, confezioni da 20 Terreni su piastra pronti all'uso, confezioni da 120 ULTERIORI INFORMAZIONI Per ulteriori informazioni, rivolgersi al rappresentante BD di zona. Becton Dickinson GmbH Tullastrasse 8 – 12 D-69126 Heidelberg/Germany Phone: +49-62 21-30 50 Fax: +49-62 21-30 52 16 [email protected] http://www.bd.com http://www.bd.com/europe/regulatory/ ATCC is a trademark of the American Type Culture Collection BD, BD Logo and all other trademarks are the property of Becton, Dickinson and Company. © 2013 BD PA-254055.06 -4-