RITA PULIMENO

CURRICULUM VITAE ET STUDIORUM
RITA PULIMENO
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ESPERIENZE PROFESSIONALI
Da 04/2007
Collaboratrice professionale presso l’azienda di ricerca Biotecgen S.r.l.
01/2004-01/2006
Vincitrice di una Borsa di studio presso il Laboratorio di Microbiologia Molecolare e
Biotecnologie (LA.M.M.B.), Dipartimento di Biologia Molecolare, Università degli Studi di Siena.
Il progetto della borsa prevedeva lo studio dell’espressione dei recettori Toll-like in cellule THP1
stimolate con cellule di Streptococcus gordonii.
2004
Membro effettivo del comitato per la didattica del nuovo ordinamento, Corso di Laurea
Specialistica interfacoltà in Biotecnologie per la salute umana, Università degli Studi di Siena.
2002
Internato presso il Laboratorio di Microbiologia Molecolare e Biotecnologie (LA.M.M.B.),
Dipartimento di Biologia Molecolare, Università degli Studi di Siena.
ISTRUZIONE E FORMAZIONE
01/2007-03/2007
Tirocinio teorico-pratico presso il Laboratorio Analisi Cliniche “Bioclinical”. Il progetto del
tirocinio prevedeva l’approfondimento di analisi cliniche.
2006
Abilitazione all’esercizio della professione di Biologo.
05/2006-07/2006
Tirocino pratico presso il Laboratorio analisi “Ce.T.R.A.”. Il progetto del tirocinio prevedeva
l’approfondimento di analisi HACCP
2005
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Laurea specialistica in Biotecnologie per la salute umana, curriculum farmaceutico, conseguita
presso l’Università degli Studi di Siena, titolo della discussione: “Analisi dell’espressione genica
dei recettori “Toll-like” tramite PCR “Real-Time” quantitativa”, con la votazione di 110/110 e
lode.
03/2003-09/2003
Tirocinio teorico-pratico presso il Dipartimento di Scienze e Tecnologie Biologiche ed
Ambientali, Università degli Studi di Lecce. Il progetto del tirocinio prevedeva l’analisi molecolare
del gene rpoB in ceppi di Actinomadura.
2002
Laurea
triennale
in
Biotecnologie
conseguita
presso
l’Università degli Studi di Siena,
discutendo la tesi dal titolo: “Metodi per la manipolazione genetica dello Streptococcus
pneumoniae”, con la votazione di 107/110.
1998
Diploma di Maturità Professionale di Tecnico Chimico-Biologico conseguito presso l’Istituto
Professionale per l’Industria e l’Artigianato “G. Martinez” di Galatina, con punteggio 45/60.
COMPETENZE TECNICHE
Manipolazione genetica di ceppi batterici patogeni.
Mutagenesi di ceppi virulenti e quindi capsulati di Streptococcus pneumoniae mediante PCR e
trasformazione. Produzione di costrutti genetici per la delezione, la sostituzione (anche singoli
nucleotidi) e la fusione genica, tramite PCR gene SOEing (gene splicing by overlap extension).
Trasformazione in vitro di cellule pre-competenti, stimolate con CSP (competence stimulating
peptide) sintetici, utilizzando i DNA lineari ottenuti tramite PCR gene SOEing. Selezione dei ceppi
ricombinanti attraverso PCR.
Modelli di infezione murina.
Inoculo intranasale (modello di polmonite) di Streptococcus pneumoniae e relativi mutanti
isogenici, in topi outbred MF1 e inbred CBA/Jico. Valutazione del quadro clinico, della situazione
istopatologica e della conta batterica negli organi infettati.
Caratterizzazione di elementi genetici.
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Caratterizzazione di elementi genetici, veicolanti geni di resistenza antibiotica, tramite
sequenziamento; caratterizzazione dei loro siti di integrazione nel cromosoma batterico tramite PCR
inversa. Studio della trasferibilità degli elementi attraverso esperimenti di trasformazione e
coniugazione in vitro. Mutagenesi degli elementi genetici previo trasferimento in Streptococcus
pneumoniae.
Colture cellulari.
Colture di linee cellulari in sospensione (THP1) e in adesione (HeLa). Colture primarie di cellule
prelevate da organi linfoidi di topo. Stimolazione di cellule con batteri patogeni e non quali lo
Streptococcus gordonii, lo Staphilococcus aureus, l’Escherichia coli, lo Streptococcus pneumoniae.
Purificazione dell’mRNA e Real Time PCR quantitativa
Purificazione dell’mRNA da colture cellulari previa stimolazione con diverse concentrazioni
batteriche. Purificazione dell’mRNA da organi (polmone e milza) prelevati da topi infettati.
Quantificazione dell’mRNA di geni di interesse tramite RT-PCR "Real-Time" con gli strumenti
LIGHT CYCLER e OPTICON.
Analisi HACCP
Analisi chimica delle acque tramite tecniche di titolazione e utilizzo di fotometro a fiamma e
spettrofotometro. Analisi chimica degli alimenti per la valutazione dei valori nutrizionali. Analisi
batteriologica di alimenti e acque tramite l’utilizzo di terreni selettivi.
PUBBLICAZIONI ED ABSTRACT?
Vigliotta G, Tredici SM, Damiano F, Montinaro MR, Pulimeno R, Di Summa R, Massardo DR,
Gnoni GV, Alifano P. Natural merodiploidy involving duplicated rpoB alleles affects secondary
metabolism in a producer actinomycete. Mol Microbiol. 2005 Jan; 55(2):396-412.
Ciabattini A, Cuppone AM, Pulimento R, Iannelli F, Pozzi G, Medaglioni D. Stimulation of Human
Monocytes with the Gram-Positive Vaccine Vector Streptococcus gordonii. Clinical and Vaccine
Immunology. 2006 Sept; 13(9):1037–1043.
Vigliotta G, Tredici SM, Damiano F, Montinaro MR, Pulimeno R, Di Summa R, Massardo DR,
Gnoni GV, Alifano P. Natural merodiploidy involving duplicated rpoB alleles affects secondary
metabolism in a producer actinomycete. Congresso Cortona Procarioti, 31/03/2005-1/04/2005.
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CONGRESSI
2002 Decimo Congresso Nazionale SIMMOC, Siena, 19-21/06/2002.
2004 Symposium “ Immuno Responses in Inflamed Tissue”, Miltenyi Biotec, Centro
Ricerche CHIRON, Siena 5/11/2004.
2004 Convegno “Cortona procarioti”, Cortona, 31/03/2005-1/04/2005.
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